农药是控制害虫数量的关键,对农业和畜牧业等多个领域的发展具有重要意义[[1], [2], [3], [4], [5]]。其中,有机磷农药(OPs)由于有机氯杀虫剂的禁用而受到广泛关注[[6]]。在各种有机磷农药中,CPF因其成本较低且对种子发芽的影响最小而被广泛用于农业[[7,8]]。然而,CPF由于其不可逆的神经毒性和在食品中的高检出频率,对生态系统和动物健康构成了严重威胁[[9,10]]。更令人担忧的是,CPF在环境中可以转化为氯吡硫磷肟,这种代谢物的毒性据报道比CPF本身高10,000倍[[7]]。因此,开发准确且抗干扰的CPF检测方法已成为当务之急。
随着农药残留限量标准的进一步收紧,传统的色谱检测技术难以满足大规模筛查和现代食品安全监管的严格要求[[11], [12], [13], [14]]。近年来,用于基因编辑的强大工具——规律间隔短回文重复序列CRISPR/Cas(CRISPR相关)蛋白系统引起了科学界的广泛关注[[15], [16], [17]]。在之前报道的基于CRISPR/Cas12的有机磷农药检测策略中,大多数系统严重依赖于重金属离子(Mn2+, Pb2+)、酶或抗体。例如,一些研究利用Mn2+与CRISPR/Cas12系统结合来调节乙酰胆碱酯酶活性,从而构建有机磷农药荧光传感器[[18], [19], [20]]。Wang团队提出了一种结合链式杂交反应和CRISPR/Cas12a的竞争性免疫反应荧光系统,用于三唑磷的检测[[21]]。尽管这些方法取得了有希望的结果,但往往缺乏精确性和同类物质间的区分能力。最近,Tian团队将适配体与CRISPR/Cas12a结合,构建了一种便携式葡萄糖仪,用于高特异性地检测马拉硫磷[[22]]。虽然适配体的引入提高了CRISPR/Cas12a系统的靶向特异性,但这种方法需要 invertase和四种crRNA的复杂设计。更重要的是,现有的检测方法通常需要繁琐的3-6步操作流程,且检测步骤的数量与不可控因素的概率正相关,大大增加了检测结果误判的风险。因此,现有的CRISPR检测系统仍然面临缺乏简单通用方法的困境,难以在复杂基质中准确识别目标物质。作为替代方案,电化学生物传感器以其灵敏度、特异性、成本效益、长期稳定性、实时监测和低样品量需求而闻名[[23], [24], [25]]。在将CRISPR-Cas12a应用于电化学检测方法方面已经取得了显著进展[[26], [27], [28], [29]]。据我们所知,尚未有将CRISPR/Cas系统整合到电化学生物传感器中用于检测有机磷农药的报道。
在本研究中,我们开发了一种基于目标激活的LAC非特异性切割活性的新型CPF检测方法,以CPF作为模型目标。如图1所示,激活剂在两种状态下起连接作用:一种是DNA激活剂序列被CPF适配体“锁定”的状态(“锁定激活剂状态”),另一种是在目标诱导的适配体脱离后自由DNA恢复的状态(“开放激活剂状态”)。crRNA识别并结合到开放激活剂上,有效促进了后续的CRISPR/Cas12a对单链DNA(ssDNA)探针的非特异性切割。最初,完整的探针由于静电排斥和空间阻碍而阻碍了[Fe(CN)63?/4?的接近。一旦探针从电极表面移除,K3[Fe(CN)6]的有效通量增加,从而显著增强了电化学信号。值得注意的是,所提出的LAC策略为复杂基质中的CPF检测提供了一个简单的生物传感平台,表现出强烈的同类物质选择性和精确性。