SWI/SNF ATP酶Brahma和Notch信号通路与CBP/p300协同作用,调控果蝇幼虫中枢神经系统中的神经干细胞凋亡

《Developmental Biology》:SWI/SNF ATPase Brahma and Notch signaling collaborate with CBP/p300 to regulate neural stem cell apoptosis in Drosophila larval central nervous system.

【字体: 时间:2026年01月13日 来源:Developmental Biology 2.1

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  SWI-SNF酶Brahma与Notch信号通路协同调控Drosophila幼虫CNS中Hox依赖性神经干细胞凋亡,通过调控Nejire(CBP/p300)和Grh表达间接影响凋亡,并直接与Su(H)/Mastermind复合物相互作用激活grim和reaper基因。研究揭示Brahma通过增强H3K27ac标记介导染色质重塑,促进凋亡基因转录,揭示了多层级调控机制。

  
Punam Bala | Viswadica Prakki | Rohit Joshi
神经科学与细胞生物学实验室,DNA指纹识别与诊断中心(CDFD),BRIC-CDFD,内环路,Uppal,海得拉巴-500039,印度

摘要

已知SWI-SNF ATP酶Brahma和Notch信号通路在发育过程中存在相互作用,但这种相互作用在分子水平上的具体机制尚未完全阐明。我们研究了在果蝇(Drosophila)中枢神经系统(CNS)发育过程中,Hox依赖性神经干细胞(NSC)凋亡背景下Brahma与Notch相互作用的分子机制。研究结果表明,Brahma通过多种方式调控NSC凋亡:首先调节果蝇CBP/p300(Nejire)的表达以及细胞死亡的分子触发因子(Hox、bHLH因子Grainyhead和Notch信号通路);其次,Brahma直接结合到凋亡增强子上,并与Notch信号通路协作,调控RHG家族的凋亡基因(grim和reaper)。我们的数据支持以下模型:当Notch信号通路被激活时,Brahma和CSL-Su(H)/Mastermind复合体将CBP/p300招募到凋亡增强子上,从而增加核小体上的H3K27ac标记,进而促进Abd-B和Grh依赖性的凋亡基因转录。

引言

两侧对称动物(bilaterian organisms)中枢神经系统(CNS)中神经回路的精确性在很大程度上依赖于产生适当的细胞多样性[1]。这种多样性的产生以及组织稳态的维持需要神经干细胞、神经元和胶质细胞的增殖、分化和凋亡之间的精细平衡[2, 3]。这一过程由Hox家族转录因子(TFs)在特定节段中直接或间接调控[4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23]。程序性细胞死亡(PCD,即凋亡)在CNS的模式形成中起着特别重要的作用:神经元和胶质细胞的凋亡对于神经回路的精细化至关重要[24, 25, 26],而神经干细胞的凋亡则导致CNS的整体结构变化[4, 6, 13, 14, 17, 20, 21, 22, 23, 27, 28, 29]。
在CNS的发育形态发生过程中,凋亡的触发因素包括生存信号的丧失、促凋亡基因的转录诱导、生长因子信号传导、内在转录因子的作用,或是这些因素的组合。促凋亡基因的转录诱导在脊椎动物[30, 31]和无脊椎动物[8, 10, 20, 21, 22, 23, 24, 25]中均被用作凋亡的触发机制。在果蝇CNS中观察到的Hox依赖性神经干细胞(NSCs)的节段特异性凋亡,是CNS发育过程中细胞死亡调控的一种方式,对组织稳态和形态发生至关重要[4, 6, 10, 13, 14, 17, 21, 22, 23]。这种NSCs(或神经母细胞——NBs)的凋亡现象在整个CNS中普遍存在[4, 6, 13, 14, 17, 20, 21, 22, 23, 27, 28, 29],并且已被证明依赖于幼虫阶段的常驻Hox蛋白及其共因子Grainyhead(Grh)[6, 20, 22, 23, 29]。在幼虫CNS的腹部(A3-A7)和尾部(A8-A10)节段,细胞死亡发生在第三龄中期(mL3)[图1A],此时Grh和这些区域的常驻Hox因子(分别为Abdominal-A和Abdominal-B)与Notch信号通路协作,转录激活RHG家族的凋亡基因(reaper、hid和grim)[32, 33]。这种激活通过一个1 kb的增强子(F3B3)实现,该增强子的缺失会导致NBs凋亡受阻[图1A][20, 22, 23]。
Notch信号通路是一种进化上保守的、细胞间邻近信号传递方式[34]。Notch受体位于信号接收细胞的膜上。当Notch被Delta/Serrate等膜结合配体激活后,Notch的细胞内结构域(NICD)被切割并进入细胞核,与执行转录因子CSL(或在果蝇中为Su(H))结合[34]。随后,共抑制因子从Su(H)上被共激活因子Mastermind取代,后者招募CBP/p300(一种由nejire-nej基因编码的组蛋白乙酰转移酶HAT)[34, 35],从而激活下游靶基因。预期的是,Notch信号激活会导致靶增强子上H3K56ac标记的增加以及染色质可访问性的改变[35]。在果蝇唾液腺中,SWI-SNF ATP酶Brahma(Brm)有助于增强子在信号激活前的可访问性,因为Su(H)会结合到增强子DNA上[36],尽管这种相互作用需要在发育特异性的组织背景下进行验证。先前的研究还表明Brm与Notch信号通路之间存在关联,Brm-BAP复合体可调控Notch通路成分及其靶基因[36, 37];同样,Delta与Brahma的失活形式的ATP酶之间也存在相互作用[38]。尽管有证据表明Brm与Notch信号通路在发育过程中存在相互作用,但其具体分子机制尚未完全明了。
在本研究中,我们探讨了在果蝇幼虫CNS中Hox依赖性NB凋亡背景下Brahma与Notch的相互作用。研究发现,Brahma通过调控Hox(Abdominal-B,Abd-B)的表达、Grh的表达以及NBs中的Notch活性来控制NBs的凋亡。Notch信号的调控分为两个层次:首先,Brahma调节Notch信号通路成员(如Notch受体及其共激活因子Mastermind)的表达;其次,在凋亡增强子水平上,Brahma与Notch信号通路协作,激活凋亡基因grim和reaper的表达;这一过程通过Su(H)与Brahm之间的体外物理相互作用得到证实。NBs凋亡还需要CBP/p300的果蝇同源物(Nejire-Nej)在凋亡增强子上的参与。综上所述,我们的结果支持以下模型:Brahma通过调节Hox、Grh、CBP/p300及Notch信号通路成员的表达间接调控增强子的可访问性和凋亡基因的激活,并通过与Su(H)/CBP信号复合体在凋亡增强子上的协作直接发挥作用。

节段片段

Brahma的ATP酶活性在果蝇幼虫CNS的NB凋亡中起关键作用

果蝇幼虫腹侧神经索(VNC)的腹部(A3-A7节段)和尾部(A8-A10节段)的NBs从第二龄开始死亡,并在第三龄晚期(LL3)完全消失[22, 23]。在尾部节段,NBs根据dsx基因的表达进行分类[22]。在雌性CNS中,四个dsx阳性的NBs在发育的L2中期经历性别特异性的凋亡(这一过程不依赖于Grh和Notch[21](图1A)。

讨论

已知SWI-SNF ATP酶Brahma(及其同源物)和Notch信号通路在不同的细胞背景下存在相互作用。在斑马鱼心脏发育过程中,Brg1与赖氨酸去甲基酶相互作用以调节Notch受体的表达[48]。类似地,在T细胞急性淋巴母细胞白血病中,NICD-Su(H)-Mam同源物与PBAF复合体和组蛋白去甲基酶共同促进Notch靶基因的表观遗传修饰[49]。在左右对称性发育过程中,...

统计分析

对于具有零值对照组的计数实验,我们使用GraphPad Prism 8.0进行了Fisher精确检验;对于具有非零对照值和测试值的计数数据,我们使用“R”软件进行了广义线性回归(GLM)和二项逻辑回归来分析差异。

CRediT作者贡献声明

Punam Bala:撰写原始稿件、数据可视化、实验设计、数据分析、数据管理。 Rohit Joshi:撰写原始稿件、项目监督、方法论制定、资金获取、数据分析、概念构思。 Viswadica Prakki:实验设计、数据分析、数据管理

数据可用性声明

所有相关数据均包含在手稿及其支持信息文件中。

作者声明无利益冲突

资助机构未参与研究方向的决策。

竞争利益声明

致谢

我们感谢J. Knoblich和A. Brand提供的试剂;BDSC、VDRC、NIG-Fly和DGRC-Japan提供的果蝇品系;CDFD动物设施、Chennai的Bioklone Biotech Pvt. Ltd.以及Iowa大学的Developmental Studies Hybridoma Bank提供的抗体和TFF;同时感谢Raviranjan Kumar在Brahma敲低系实验中的协助,以及Prakeerthi Abburi在Targeted DamID数据生成(已发表)方面的帮助。
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