靶向CD5的CAR-T细胞疗法在复发难治性血液肿瘤中的疗效与安全性:一项克服免疫抑制的新策略

《Cell Reports Medicine》:Efficacy and safety of autologous CD5-KO anti-CD5 CAR-T cells in relapsed/refractory CD5+ hematological malignancies

【字体: 时间:2026年02月03日 来源:Cell Reports Medicine 10.6

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  本研究针对复发/难治性CD5+血液肿瘤患者,开发了自体CD5基因敲除的抗CD5 CAR-T细胞(CT125A)。在7例患者中,CT125A显示出85.7%的总体缓解率,但伴随持久的CD5+T细胞缺失、感染和自身免疫事件。研究通过hCD5人源化小鼠模型揭示其皮肤特异性靶向脱靶效应,为优化CD5 CAR-T疗法安全性提供重要依据。

  
在血液肿瘤治疗领域,靶向CD19的CAR-T细胞疗法已取得显著成效,但对于表达CD5抗原的T细胞恶性肿瘤和部分B细胞淋巴瘤(如套细胞淋巴瘤和弥漫大B细胞淋巴瘤),治疗选择仍然有限。CD5作为一种广泛表达于T细胞、胸腺细胞和B1细胞亚群的免疫调节分子,成为极具吸引力的治疗靶点。然而,开发靶向CD5的CAR-T疗法面临重大挑战:由于CD5在正常T细胞表面表达,CAR-T细胞在制备过程中会发生"自相残杀"(fratricide),导致扩增困难和治疗效果受限。
为突破这一瓶颈,研究人员开展了一项创新性临床研究,并在《Cell Reports Medicine》上发表了重要成果。该研究通过CRISPR-Cas9基因编辑技术敲除T细胞中的CD5基因,成功开发了自体CD5基因敲除的抗CD5 CAR-T细胞(CT125A),用于治疗复发/难治性CD5+血液肿瘤患者。
关键技术方法
研究采用单中心、剂量递增的I期临床试验设计,纳入7例CD5+血液肿瘤患者。通过CRISPR-Cas9介导的CD5基因敲除和慢病毒载体转导CAR基因制备CT125A产品。采用流式细胞术、数字PCR等技术监测CAR-T细胞在体内的动态变化和免疫重建过程,并通过hCD5人源化小鼠模型验证靶向脱靶效应。
患者入组和CT125A制备
2012年2月至10月,7例复发/难治性CD5+血液肿瘤患者入组,疾病类型包括间变性大细胞淋巴瘤、血管免疫母细胞性T细胞淋巴瘤、皮下脂膜炎样T细胞淋巴瘤、套细胞淋巴瘤和弥漫大B细胞淋巴瘤。所有患者均成功制备CT125A产品,CAR阳性细胞中位比例为28.33%,制备至释放中位时间为11天。
临床疗效
CT125A显示出显著的治疗效果,总体缓解率达到85.7%,其中4例患者达到完全缓解,2例达到部分缓解。患者1在随访902天时仍保持无病生存。然而,2例患者分别在170天和182天时出现疾病复发,其中1例复发肿瘤表现为CD5阴性,提示抗原逃逸机制。
安全性特征
所有患者均出现细胞因子释放综合征(CRS),其中6例为1-2级,1例为3级。免疫效应细胞相关神经毒性综合征(ICANS)发生率为28.6%,均为1级。最显著的毒性反应是血液学毒性,所有患者出现白细胞减少、中性粒细胞减少和淋巴细胞减少,71.4%出现血小板减少和贫血。
感染成为主要并发症,6例患者出现EB病毒再激活,4例出现巨细胞病毒再激活,4例出现BK病毒感染。2例患者因疑似感染死亡。值得注意的是,71.4%的患者出现皮疹和皮肤刺痛,28.6%出现口干症,14.3%出现干燥眼、甲状腺功能减退和肾上腺功能不全等自身免疫相关症状。
CT125A的药代动力学特征
CAR-T细胞在体内迅速扩增,中位峰值时间为14天,峰值拷贝数达87,178/μg DNA。CAR-T细胞在体内持久存在,在患者1中可检测超过809天,表明CT125A具有优越的体内持久性。
淋巴细胞亚群的动态变化
治疗后,CD3+T细胞在1个月内恢复至淋巴清除前水平,但重建的T细胞持续不表达CD5蛋白。CD19+B细胞在输注后迅速耗竭且长期未能恢复。CD4/CD8比值持续低于1,提示CD8+T细胞优势增殖。
hCD5人源化小鼠模型中的验证
研究利用hCD5人源化小鼠模型进一步验证CT125A的作用机制。结果显示,hCD5 CAR-T细胞输注后可引起皮肤特异性病变,而心脏、肝脏、肾脏等重要器官未见显著受累。免疫组化证实hCD5在皮肤真皮层表达,而在其他器官不表达,解释了临床观察到的皮肤相关不良事件。
研究结论与意义
该研究证实了CT125A在复发/难治性CD5+血液肿瘤中的显著疗效,但也揭示了伴随持久免疫抑制带来的安全性挑战。CD5基因敲除成功解决了CAR-T细胞制备中的自相残杀问题,增强了细胞体内持久性。然而,长期的CD5+T细胞和B细胞缺失导致严重感染和自身免疫样症状,需要通过优化CAR-T细胞持久性来控制毒性。
研究首次通过hCD5人源化小鼠模型阐明CD5 CAR-T细胞的皮肤特异性靶向脱靶效应,为理解其毒性机制提供了重要依据。这些发现不仅推动了CD5靶向CAR-T疗法的发展,也为其他靶向广泛表达抗原的细胞疗法提供了安全优化策略。未来研究应聚焦于如何平衡治疗效果与毒性,可能通过引入安全开关、调节CAR-T细胞持久性或联合造血干细胞移植等策略,进一步提升CD5 CAR-T疗法的临床价值。
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