深度学习驱动的可扩展癌症器官芯片平台:推动精准癌症医学的新范式

《Advanced Science》:Deep Learning-Powered Scalable Cancer Organ Chip for Cancer Precision Medicine

【字体: 时间:2026年02月05日 来源:Advanced Science 14.1

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  本文推荐一款创新型可扩展癌症器官芯片(OC)平台,该平台采用全热塑性注塑成型技术,通过专利通道设计实现无屏障水凝胶约束,支持组织特异性细胞外基质(ECM)共培养与多模式灌注。结合深度学习驱动的明场图像荧光预测技术,可实现无标记纵向表型分析,为高通量药物敏感性测试(IC50、AUC量化)提供临床相关性更高的功能精准肿瘤学解决方案。

1 引言

功能精准肿瘤学通过直接检测患者来源模型对治疗方案的反应,成为基因组方法的重要补充。然而现有技术如患者来源异种移植模型(PDX)和患者来源类器官(PDO)面临标准化不足、成本高、周期长及肿瘤微环境(TME)模拟不完整等挑战。器官芯片(OC)技术通过微加工策略模拟人体组织功能,但传统设计存在结构复杂、成本高昂等问题。本研究提出一种基于热塑性注塑成型的新型OC平台,通过毛细管钉扎效应实现无膜无微柱的水凝胶约束,并整合深度学习图像转换模型,为癌症精准医疗提供高通量解决方案。

2 结果

2.1 可扩展OC-Plex器件的开发

OC-Plex平台采用聚苯乙烯(PS)注塑成型,每个芯片包含凝胶通道与灌注通道,通过几何扩张界面与表面功能化实现水凝胶的自主约束(成功率>90%)。该设计支持胶原蛋白I(col-1)与基质胶(BME)等多种基质,可形成氧分压梯度并与人脐静脉内皮细胞(HUVEC)共培养血管化结构。四芯片模块化组合(OC-Plex 32)兼容自动化操作系统,重力驱动或泵控灌注模式灵活适配。

2.2 OC-Plex支持癌细胞生长与药物敏感性测试

以胰腺癌BxPC-3细胞为例,单细胞嵌入胶原蛋白I后8天内形成聚集体,活死染色显示高存活率。通过明场图像Z轴投影与特征提取(如聚集体比例、面积),建立纵向生长量化流程。药物测试中,吉西他滨、吉非替尼和奥希替尼的剂量反应曲线通过成像指标(标准化活细胞面积、活死细胞面积比)与CellTiter-Glo(CTG)ATP检测对比,显示成像数据变异更小且灵敏度更高。 caspase-3/7联合染色可进一步提升药物响应检测灵敏度。

2.3 癌细胞药物敏感性分析

比较短期(1天)与长期(6–7天)培养模型发现,三维芯片培养的癌细胞对药物敏感性普遍低于二维培养,且长期培养后耐药性增强。在肺癌A549、结肠癌HCT116/HT-29模型中,成像读值较CTG显示出更优的数据稳定性。自动化液体处理系统可缩短70%操作时间,证明平台的高通量潜力。

2.4 患者来源细胞的药物测试

利用肺鳞癌(LUSC)患者原代细胞验证临床相关性。芯片模型中培美曲塞无效的结果与临床指南(该药不适用于鳞癌)一致,而二维培养呈现假阳性。此外,胃癌类器官与外周血单核细胞(PBMC)共培养模型中,PD-1抑制剂信迪利单抗呈现剂量依赖性杀伤效应,证明平台可模拟免疫治疗响应。

2.5 深度学习驱动的无标记表型分析

采用U-net架构卷积神经网络,将明场(BF)图像转换为荧光等效图像(DAPI/TRITC通道)。模型预测特征(总强度、总面积)与真实荧光图像相关性达0.89–0.92。通过基线标准化(第6天至第8天变化量)分析药物反应,显著提升检测灵敏度,并可校正染色不均问题,实现纵向动态监测。

3 讨论

OC-Plex平台通过无屏障设计克服了传统芯片的复杂性限制,其热塑性材料降低小分子吸附风险。患者来源模型与临床反应的一致性(如培美曲塞对鳞癌无效)凸显其临床转化价值。深度学习辅助的无标记成像突破了荧光显微镜的时空限制,为高通量药物筛选提供动态分析工具。未来需扩大患者队列并整合更多TME组分以进一步提升预测准确性。

4 材料与方法

芯片通过注塑与热键合工艺制造,表面经聚乙二醇(PEG)功能化。细胞培养采用胶原蛋白I或BME基质,药物处理时长48–144小时。成像通过自动化显微镜获取Z轴栈图,深度学习模型训练采用均方误差损失函数,特征提取基于Otsu阈值分割。统计学分析使用GraphPad Prism 9.0,显著性阈值*p< 0.05。

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