通过改造来自地杆菌属(Geobacillus sp.)的GtfC型4,6-α-葡聚糖转移酶突变体,显著抑制了蜡质米淀粉的降解过程并提高了其消化率

《Food Bioscience》:Enhanced suppression of retrogradation and digestibility in waxy rice starch by engineered mutants of GtfC type 4,6-α-glucanotransferase from Geobacillus sp.

【字体: 时间:2026年02月05日 来源:Food Bioscience 5.9

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  淀粉改性技术中,α-1,6-葡萄糖苷酶通过定向进化构建突变体提升催化活性,降低淀粉分子量至约4.18×107,增加DP≤12短链比例达35.77%-43.65%,显著抑制回生和减缓消化。研究通过分子动力学模拟和酶-底物对接分析优化关键氨基酸残基,K342V突变体回生焓降低至0.27 J/g,RDS含量下降至75.91%,SDS含量提升至22.88%。

  
李丹|刘宇伟|段翠翠|马福民|李秉浩|李晓蕾
吉林省教育厅农业产品加工技术重点实验室,长春大学,中国长春市卫兴路6543号,130022

摘要

4,6-α-葡聚糖转移酶(GtfC)可通过催化链间或链内转糖基化反应在淀粉中引入短链。为了提高来自Geobacillus属的野生型(WT)GsGtfC的活性,基于氨基酸比对、酶-底物对接和动态模拟,通过定点突变技术设计了15个突变体。在2 U/g的淀粉浓度下,5个突变体的比活性提高了1.02–1.63倍,淀粉的分子量从8.85×107降至4.18×107–9.58×106,短链含量(DP≤12)从33.18%增加到35.77–43.65%。K342V突变体修饰的淀粉的回生焓降低到0.27 J/g,而WT突变体为0.69 J/g。K520A突变体修饰的淀粉的快速消化淀粉(RDS)含量降至75.91%,WT突变体为83.20%;缓慢消化淀粉(SDS)含量分别增加到22.88%和11.85%。D350N、K520A和K342E突变体修饰的淀粉在120分钟时,在小肠α-葡萄糖苷酶作用下的葡萄糖释放量显著低于WT突变体。氨基酸替换增强了酶-底物的亲和力,并稳定了关键的疏水相互作用,从而提高了酶活性。

引言

蜡质米以其独特的粘性和糯性、多孔结构以及出色的保水能力而广用于粽子、传统糕点、汤圆和米酒的制作(Shoukat等人,2025年)。蜡质米淀粉具有独特的成分,支链淀粉(amylopectin)含量高达99.70%,而直链淀粉(amylose)含量较低(Kang等人,2010年)。支链淀粉具有高度分支的结构,含有α-1,4和α-1,6糖苷键,分子量较大,形成了更紧密的短程有序结构(Murray & Phisarnchananan,2014年)。消化酶容易攻击其非晶区域,在消化过程中迅速将其转化为葡萄糖(Kaur等人,2016年),导致血糖水平急剧上升,因此被归类为高血糖指数食品(Farooq & Yu,2025年)。长期食用蜡质米可能会增加心血管疾病的风险(Ali & Hashim,2024年;Singh等人,2010年)。蜡质米淀粉含有较多的短链,因此在糊化后比普通米淀粉具有更强的抗回生能力。然而,由于支链淀粉外部链的重排,长期储存后仍会变硬(Hsieh等人,2019年)。蜡质米淀粉的消化性和回生行为受其颗粒大小、支链淀粉的链长分布及其结构组织的影响(Singh等人,2010年)。因此,了解蜡质米淀粉的结构、降低其消化性并延缓其回生对于其在健康淀粉基食品中的应用至关重要。
通过发现和应用特定的淀粉水解酶,可以对淀粉进行体外酶修饰,有效抑制回生并降低消化性,从而调节链长和分支密度(Zhai等人,2022年)。Amylosucrase可以将蔗糖的葡萄糖基团转移到稻米支链淀粉的非还原末端。Pullulanase特异性切割稻米支链淀粉中的α-1,6糖苷键,生成低DP(聚合度)的α-1,4葡聚糖链。蜡质米淀粉的延长支链(Kim等人,2016年)和去支链的α-1,4葡聚糖链(Zeng等人,2015年)分别容易形成螺旋结构。双螺旋结构的形成通过氢键和其他分子间相互作用增强了它们的组织性和稳定性。因此,破坏双螺旋结构并熔化结晶结构需要更高的能量(Guo等人,2020年)。
α-1,4-葡聚糖分支酶(BE)可以切割稻米支链淀粉外部葡聚糖链的α-1,4糖苷键,将α-1,4连接的葡萄糖基团转移到同一葡聚糖链或邻近葡聚糖链的C-6羟基上。这一作用增加了分支点的数量和短链的比例。β-淀粉酶通过从非还原末端释放麦芽糖单元,进一步缩短支链,并增加BE修饰后淀粉的α-1,6糖苷键含量(Xu等人,2025年)。葡糖淀粉酶(GA)从淀粉的非还原末端断裂糖苷键,释放β-葡萄糖单元。这一过程产生了更多DP 6-12的支链,这些支链适合作为后续BE修饰的底物。双酶修饰的淀粉显著增加了短链的数量,并降低了结构刚性。
这些酶单独或联合使用,改变了淀粉的关键结构参数,如α-1,6糖苷键与α-1,4糖苷键的比例以及结晶度。这种重构使得淀粉对酶消化的抵抗力增强,表现为缓慢消化淀粉和/或抗性淀粉的比例增加。
4,6-α-葡聚糖转移酶是一种属于GH70糖苷水解酶家族的新型α-葡萄糖转移酶(Kralj等人,2011年)。与其他利用蔗糖作为葡萄糖供体的酶不同,4,6-α-葡聚糖转移酶在麦芽寡糖和淀粉中催化内部转糖基化反应。该反应生成连续的α-1,6键或引入短链,从而形成异麦芽糖和麦芽多糖或类Reuteran多糖。根据其结构域排列,4,6-α-葡聚糖转移酶进一步分为三种类型:GtfB、GtfC和GtfD(Rao等人,2022年)。这些类型具有不同的底物特异性和产物结构。来自Geobacillus sp. 12AMOR1的GsGtfC酶是已知最耐热的4,6-α-葡聚糖转移酶之一(Li等人,2022年)。这种卓越的耐热性使得淀粉在高温下转化的同时保持酶的结构完整性和催化活性,从而降低底物粘度并减少微生物污染。这一特性与大多数在嗜温或嗜冷条件下发挥作用的4,6-α-葡聚糖转移酶明显不同(te Poele等人,2021年)。
在本研究中,基于氨基酸比对、酶-底物对接和分子动态模拟,通过定点突变技术构建了5个活性增强的GsGtfC突变体。与野生型GsGtfC相比,这些突变体产生了更高比例的短链,这些短链具有抗结晶性,并且仅被肠道异麦芽糖酶缓慢去支链。这些结构变化降低了淀粉的回生性,并改善了其缓慢消化性能。本研究不仅基于新发现阐明了关键氨基酸残基在4,6-α-葡聚糖转移酶活性中的作用,还建立了关键氨基酸残基与淀粉结构/消化性/回生之间的关系。这些发现展示了4,6-α-葡聚糖转移酶在开发体内缓慢释放葡萄糖的新谷物食品方面的巨大潜力。

部分摘录

淀粉、酶和化学试剂

蜡质米淀粉、氢氧化钠溶液(50%水溶液)、大鼠肠粉和醋酸钠购自Sigma-Aldrich(美国密苏里州圣路易斯)。直链淀粉、Pseudomonas属异淀粉酶、猪胰α-淀粉酶和Aspergillus niger淀粉葡萄糖苷酶来自Megazyme(爱尔兰威克洛)。GenRec Assembly Master Mix Kit由General Biosystems(中国株洲)提供。葡萄糖测定试剂盒来自Huili Biotechnology(中国长春)。超纯水由...

基于分子模拟和生物信息学分析设计GsGtfC突变体

使用分子动力学(MD)模拟了GsGtfC与G7之间的分子相互作用。分析了GsGtfC-G7复合物的稳定性和结构动态,以及GsGtfC的结构紧凑性。
均方根偏差(RMSD)反映了某一时刻构象与目标构象的平均原子位移,是系统稳定性的重要指标(J. Li等人,2024年)。如图1A所示...

结论

总之,为了提高来自Geobacillus sp. 12AMOR1的4,6-α-葡聚糖转移酶GsGtfC的催化性能和效率,我们通过基于分子动力学模拟的定点突变技术成功构建了几个GsGtfC突变体。活性最高的突变体D350N的比活性比野生型酶提高了1.63倍。特定氨基酸残基的替换增强了底物亲和力并稳定了关键疏水相互作用...

CRediT作者贡献声明

李丹:验证、监督、项目管理、研究、资金获取、概念构思。李晓蕾:监督、项目管理、方法学、资金获取、正式分析、概念构思。马福民:写作 – 审稿与编辑。李秉浩:写作 – 审稿与编辑。刘宇伟:写作 – 初稿撰写、软件使用、方法学、数据管理。段翠翠:写作 – 审稿与编辑

未引用参考文献

Li等人,2024年;te Poele等人,2021年。

利益声明

作者声明没有竞争性财务利益。

数据可用性

数据可应要求提供。

利益冲突声明

作者声明没有可能影响本文工作的已知竞争性财务利益或个人关系。

致谢

本研究部分得到了吉林省科学技术发展计划(20240601074RC)的支持,该计划由吉林省科技部门提供。
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