DPP4抑制通过调节代谢与炎症通路改善人诱导多能干细胞来源的脂肪变性肝样细胞功能

《Frontiers in Cell and Developmental Biology》:DPP4 inhibition affects metabolism and inflammation associated pathways in hiPSC-derived steatotic HLCs

【字体: 时间:2026年02月26日 来源:Frontiers in Cell and Developmental Biology 4.3

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  本研究构建了人诱导多能干细胞(iPSC)来源的脂肪变性肝样细胞(HLC)模型,揭示了代谢功能障碍相关脂肪肝病(MAFLD)中二肽基肽酶4(DPP4)活性升高及其与炎症、代谢通路的关联。通过抑制DPP4活性,部分逆转了脂肪变性表型,为理解MAFLD的肝细胞内在机制及DPP4抑制剂的治疗潜力提供了新见解。

  
引言
脂肪肝病已成为全球工业化国家日益严重的健康负担。其早期、可逆阶段包括脂肪变性和脂肪性肝炎,可进一步发展为不可逆的纤维化、肝硬化甚至肝细胞癌。肥胖和2型糖尿病(T2DM)是代谢功能障碍相关脂肪/脂肪变性肝病(MAFLD/MASLD)的直接诊断标准。这是一种复杂的多系统疾病,治疗选择有限,瑞美替罗(resmetirom)是目前唯一获得FDA批准的MASLD治疗药物。二肽基肽酶4(DPP4,又称CD26)是一种丝氨酸蛋白酶,参与炎症、感染、免疫疾病、T2DM、肾脏疾病和癌症等多种病理过程。DPP4被认为是肝脏因子,在代谢性肝病中上调,并是炎症的驱动因子。DPP4抑制剂(如维格列汀VILDA)已用于T2DM治疗。本研究旨在利用iPSC衍生的HLCs模型,阐明DPP4在MAFLD发展中的作用及其与代谢和炎症的关联。
材料与方法
本研究使用了来自四个个体的iPSC系(两个健康对照,两个重度脂肪变性患者),并采用已发表的二维分化方案将其分化为HLCs。通过免疫细胞化学、qRT-PCR、蛋白质印迹和细胞色素P450活性测定对分化阶段进行表征。使用400 μM油酸(OA)处理HLCs 7天以诱导脂肪变性表型,并通过BODIPY和PLIN2染色确认脂滴形成。在OA诱导48小时后,加入30 μM VILDA共同处理5天以抑制DPP4活性。通过基于NGS的全转录组分析、ELISA检测DPP4分泌、DPP4活性测定以及细胞因子阵列分析,研究OA和VILDA处理对基因表达、蛋白分泌和炎症因子谱的影响。使用KEGG和GO通路富集分析对差异表达基因进行功能注释。
结果
1. iPSC衍生的肝样细胞(HLC)分化与表征
成功将来自四个供体的iPSCs分化为HLCs。分化效率高,超过90%的细胞表达DE标志物SOX17和HE标志物HNF4a,至少80%的HLCs表达HNF4a。HLCs显著上调了肝细胞标志物ALB、CYP3A4和CYP2D6的基因表达,并表现出CYP3A4和CYP2D6酶活性,证实了其功能性。
2. 油酸(OA)诱导HLCs脂肪变性表型
OA处理成功在所有细胞系中诱导了PLIN2包被的脂滴形成。转录组分析显示,OA处理后,三个细胞系(Cntrl 1, Cntrl 2, Stea 1)的基因表达聚类主要依据处理方式而非遗传背景。通路分析发现,谷胱甘肽代谢等通路基因显著下调,而PPAR信号通路、AMPK信号通路、脂肪酸代谢、TNF信号通路和NF-κB通路等与脂肪变性和炎症相关的基因显著上调。qRT-PCR验证了PLIN2、FABP1、CPT1A等基因的上调趋势,表明成功诱导了与MAFLD相关的分子表型。
3. OA处理促进DPP4分泌和活性
通过对脂肪变性HLCs分泌组的分析,发现DPP4是潜在的关键介质。ELISA检测证实,OA处理后,HLCs分泌的DPP4显著增加,其中健康对照细胞系的增加幅度(约4-5倍)大于患者来源细胞系(约2倍)。然而,DPP4的基因和蛋白表达水平并未发生显著变化。重要的是,DPP4的酶活性在OA处理后显著升高。
4. 维格列汀(VILDA)抑制DPP4活性并调节基因表达
VILDA处理不影响DPP4的mRNA、蛋白表达或分泌,但能显著降低由OA诱导升高的DPP4酶活性,使其恢复到模拟处理水平。这表明VILDA主要作用于DPP4的活性而非其表达。
对Cntrl 1细胞系的全转录组分析表明,VILDA对基因表达的影响弱于OA。差异表达基因分析发现,在OA基础上加用VILDA后,有29个基因显著上调,31个基因显著下调。通路富集分析显示,VILDA处理下调了与炎症性肠病、哮喘和1型糖尿病(T1DM)相关的通路基因,其中HLA-DQA1和HLA-DMB是这些通路的共有基因。qRT-PCR证实,HLA-DMA、HLA-DMB和HLA-DRB1在OA处理后表达有升高趋势,而在OA+VILDA处理后呈现下调趋势。
另一方面,VILDA处理上调了与嘌呤代谢和脂肪酸生物合成相关的代谢通路基因。例如,参与嘌呤代谢的TKFC和NT5C2在OA处理后下调,而VILDA处理使其表达回升。参与脂肪酸代谢的AGPAT2在OA处理后上调,VILDA处理进一步增强了这种上调。PLIN3基因表达也呈现类似趋势,但其蛋白水平无显著变化。
讨论
本研究建立的iPSC-HLC模型成功再现了MAFLD的关键特征,包括脂质积累和与疾病相关的代谢、炎症通路失调。OA诱导的脂肪变性触发了PPAR、AMPK、TNF和NF-κB等关键通路的改变。
研究发现,脂肪变性HLCs分泌的DPP4活性显著增加,而DPP4的表达水平不变,提示DPP4的调节可能发生在翻译后或分泌水平。使用DPP4抑制剂VILDA可有效降低其酶活性。
转录组学分析表明,VILDA处理部分逆转了OA引起的基因表达变化:它下调了与炎症(特别是HLA II类分子相关)通路相关的基因,同时上调了嘌呤和脂肪酸代谢相关基因。这提示DPP4抑制可能在脂肪变性背景下,通过调节代谢和炎症之间的相互作用产生有益影响。尽管VILDA也可能抑制DPP8/9,但考虑到DPP9在模型中表达水平很低,观察到的效应很可能主要由DPP4抑制介导。
研究局限性包括样本量较小、患者与对照细胞系间的差异有限,以及VILDA的效应相对温和。未来需要更多细胞系、更长时间的处理以及包含多种肝脏细胞类型的复杂模型(如类器官或共培养系统)来进一步阐明DPP4在MAFLD中的精确作用机制。构建人DPP4敲除的HLCs模型将有助于剖析DPP4在肝细胞自主性功能中的作用。
结论与展望
综上所述,本研究利用人iPSC衍生的HLCs模型,聚焦于肝细胞在脂肪变性进展中的特异性贡献。研究发现DPP4活性与脂肪变性表型相关,并且用VILDA抑制DPP4活性,能在全转录组水平上部分缓解脂肪变性表型,影响代谢和炎症相关通路。这些发现为理解DPP4在MAFLD肝细胞内在机制中的作用提供了新见解,并支持进一步探索DPP4抑制剂在该疾病中的治疗潜力。未来,将人DPP4敲除HLCs整合到多细胞肝脏模型中,将有助于更全面地理解DPP4在健康和疾病状态下的作用机制,以及肝脏内不同细胞类型之间的相互作用。
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