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Leptobotia bellacauda(硬骨鱼纲:鲤形目:Botiidae科)的完整线粒体基因组及其系统发育分析
《Mitochondrial DNA Part B》:The complete mitochondrial genome and phylogenetic analysis of Leptobotia bellacauda (Teleostei: Cypriniformes: Botiidae)
【字体: 大 中 小 】 时间:2026年03月09日 来源:Mitochondrial DNA Part B 0.5
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Leptobotia bellacauda的完整线粒体基因组首次测序,分析显示其16,591 bp基因组含13种PCGs、22种tRNA、2种rRNA及控制区,GC含量45.0%,符合鱼类线粒体高AT低GC特征。系统发育分析表明该物种在Leptobotia属内与L. punctata亲缘关系最近,支持其分类地位,并揭示L. hengyangensis与Botia属亲缘更近的演化特征。研究为该属物种分类和系统发育研究提供重要分子证据。
首次对Leptobotia bellacauda的完整线粒体基因组进行了测序和鉴定。该线粒体基因组是一个16,591 bp的环状分子,包含13个蛋白质编码基因(PCGs)、22个转运RNA(tRNA)基因、2个核糖体RNA(rRNA)基因以及一个控制区域。核苷酸组成比例为:A 24.4%、T 30.6%、C 28.6%、G 16.4%。系统发育分析确认了L. bellacauda在其同属物种中的进化位置,并表明L. bellacauda与L. punctata的亲缘关系更密切。本研究为研究L. bellacauda的分类学和系统发育提供了重要的分子生物学证据,同时也加深了我们对Leptobotia属分子系统发育和进化的理解。
Leptobotia属主要分布于中国和越南北部,属于鲤科(Cypriniformes)中的小型至中型底栖淡水鱼类,这些鱼类是东南亚特有的(Chen Citation1980)。由于该属物种体型较小、分布广泛且栖息地复杂,可能存在尚未被发现或描述的物种。传统上,这类鱼类的鉴定主要依赖于其眼部及脸颊特征。然而,仅凭形态特征对Leptobotia属鱼类进行鉴定并不准确,容易导致分类错误。这主要是因为Leptobotia属中的某些物种与其他亚科鱼类在形态上存在相似性。例如,Leptobotia zebra(Wu, Citation1939)最初是根据其眶下棘的简单结构(不分支)进行鉴定的,而后来通过研究线粒体DNA(mtDNA)基因序列发现它与Sinibotia属的关系更为密切,因此对其进行了重新分类(Chen Citation1980; Tang et al. Citation2008)。因此,在实际的分类学研究中,通常会采用分子生物学技术等额外方法来提高分类的准确性。
Leptobotia bellacauda作为新物种于2016年根据形态特征被描述(Bohlen and ?lechtová Citation2016),目前关于该物种的遗传信息报告较少。本研究确定了L. bellacauda的完整线粒体基因组,并探讨了Leptobotia属物种间的系统发育关系,有助于从分子生物学角度明确其分类地位,并为进一步研究Botiidae科的分类学和系统发育关系提供依据。
L. bellacauda标本采集自2023年4月的Qiupu河(北纬29°51′10.74″,东经117°21′35.39″),该河是长江下游的一级支流()。根据形态特征将其与其他Leptobotia物种区分开来。从尾鳍中提取组织样本,并将活体标本放归捕获地点(Ceruso et al. Citation2018)。鳍组织样本用95%乙醇保存,并存放在安庆师范学院(AQNU,https://www.aqnu.edu.cn/),联系人YijunLi,邮箱l1811167006orz@163.com,样本编号为MWBQ001。使用TIAN Genomic DNA Kit(TIANGEN,北京)提取基因组DNA,并通过0.8%琼脂糖凝胶电泳评估DNA质量。使用NanoDrop 2000(Thermo Fisher Scientific,马萨诸塞州沃尔瑟姆)测定DNA浓度,通过A260/A280比值(1.8–2.2)评估DNA纯度。合格的提取DNA随后储存在?20?°C条件下以备后续分析。
图1. L. bellacauda的照片(Bohlen and ?lechtová Citation2016)。照片由通讯作者Yuxi Lian拍摄。

L. bellacauda的完整线粒体基因组使用Illumina NovaSeq 6000平台(加利福尼亚州圣地亚哥)进行测序,采用配对末端测序策略(2 × 150?bp),测序前进行了质量检测。使用metaSPAdes软件(Nurk et al. Citation2017)将测序数据组装成contigs,并以Leptobotia punctata的线粒体基因组(Li et al. Citation2008)作为参考进行比对分析。使用mitoMaker软件(Schomaker-Bastos and Prosdocimi Citation2018)对线粒体基因组进行注释,并使用OGDRAW(Stephan et al. Citation2019生成基因环图。测序深度和覆盖度图的详细信息见补充表S1。基于L. bellacauda和其他17种鱼的完整线粒体基因组序列,使用MEGA-X构建了最大似然(ML)系统发育树,统计支持通过1000次自助法复制进行评估(Kumar et al. Citation2018; Stéphane & Olivier Citation2003)。
L. bellacauda的完整线粒体基因组已成功测序,得到一个16,591?bp的闭合环状双链DNA分子(GenBank登录号:PQ822055)。整体核苷酸组成为A 24.4%、T 30.6%、C 28.6%、G 16.4%,GC含量为45.0%。基因组包含13个蛋白质编码基因(PCGs)、22个转运RNA(tRNA)基因、2个核糖体RNA(rRNA)基因(12S rRNA和16S rRNA)、一个复制起点(OL)和一个控制区域(CR)()。其中8个tRNA位于轻链(L)上,其余14个tRNA位于重链(H)上。12个PCGs位于重链(H)上,只有
图2. L. bellacauda的环状线粒体基因组图。NADH脱氢酶、细胞色素c氧化酶、细胞色素b、tRNA和ATP合酶用不同颜色标记。tRNA根据三字母氨基酸代码进行标注。
l. bellacauda的环状线粒体基因组图。nadh脱氢酶、细胞色素c氧化酶、细胞色素b、trna和atp合酶用不同颜色标记。trna根据三字母氨基酸代码进行标注。为了确定新描述基因组的系统发育位置,我们下载了botiidae和cobitidae科16个物种的线粒体基因组,并以lateolabrax japonicus(cuvier, 1828)作为外群进行系统发育分析()。结果显示系统发育树分为两个分支:leptobotia属和
图3. 使用mega-x中的最大似然(ml)推断方法构建了l. bellacauda与其他17种鱼的系统发育树。内群包括:leptobotia elongata(nc018764)(li et al. citation2012);leptobotia microphthalma(nc024049)(tian et al. citation2014);leptobotia rubrilaris(nc022851)(tian et al. citation2015);leptobotia pellegrini(nc031602)(未发表);leptobotia taeniops(nc026130)(min et al. citation2016);leptobotia punctata(mh644033)(未发表);leptobotia mantschurica(nc008677)(saitoh et al. citation2006);leptobotia hengyangensis(nc061212)(未发表);botia udomritthiruji(nc031601)(未发表);botia lohachata(nc027495)(yu et al. citation2016);misgurnus anguillicaudatus(nc011209)(he et al. citation2008);misgurnus mohoity(nc022712)(yu et al. citation2015);misgurnus bipartitus(nc022854)(huang et al. citation2015);cobitis lutheri(nc022717)(tang et al. citation2006);cobitis matsubarai(nc029441)(未发表);cobitis sinensis(nc007229)(未发表);lateolabrax japonicus(nc042503.1)(lavoué et al. citation2014)。
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