构建人类二维大脑类器官解离细胞模型:高通量研究阿尔茨海默病神经炎症的定量新方法平台

《npj Dementia》:A high-throughput, quantitative platform using 2D dissociated human cerebral organoids to model neuroinflammation in Alzheimer’s disease

【字体: 时间:2026年03月10日 来源:npj Dementia

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  为了深入理解阿尔茨海默病(AD)中神经炎症的关键作用,并开发新型方法学(NAM)以评估潜在疗法,研究人员利用人脑类器官衍生的二维解离细胞(dcOrgs)平台,通过单纯疱疹病毒1型(HSV-1)感染模拟AD相关病理。研究发现,HSV-1感染可诱导细胞内β-淀粉样蛋白(Aβ)聚集、磷酸化Tau(pTau)增多、分泌Aβ42/40比例降低等AD样分子表型,并发现转录组变化富集于AD相关基因。此高通量、可定量平台为筛选针对神经炎症的AD治疗药物提供了有力工具,可补充三维类器官和动物模型的不足。

阿尔茨海默病(Alzheimer's disease, AD)是一种困扰全球的神经退行性疾病,其典型病理特征包括脑内β-淀粉样蛋白(Amyloid-β, Aβ)斑块沉积和过度磷酸化的Tau蛋白(p-Tau, pTau)形成的神经原纤维缠结。越来越多的证据表明,神经炎症是驱动AD发生与发展的重要推手。其中,病毒等病原体感染,特别是单纯疱疹病毒1型(Herpes Simplex Virus 1, HSV-1),被发现与AD患病风险及病理变化存在关联,提示病原体触发的免疫反应可能参与了AD的发病过程。为了更深入地理解这种关联并开发新的治疗策略,科学家们需要能够模拟人脑复杂微环境的实验模型。传统的小鼠模型在物种间存在差异,而近年来兴起的三维(3D)人脑类器官(cerebral organoids)虽能高度模拟脑结构,但在进行高通量药物筛选时面临通量低、细胞感染/药物处理不均一等挑战。那么,能否建立一个既保留人脑细胞多样性,又适用于大规模、标准化检测的实验平台呢?
针对上述挑战,这项发表于《npj Dementia》的研究报道了一个创新的解决方案。研究人员构建了一个基于二维(2D)培养的人脑类器官解离细胞(dissociated cells from cerebral organoids, dcOrgs)的高通量定量平台,用于模拟和研究AD相关的神经炎症。这个平台巧妙地结合了人脑类器官的细胞复杂性(包含神经元、星形胶质细胞、小胶质细胞等)和2D细胞培养的通量优势,为研究HSV-1感染如何诱发AD样病理变化,以及测试潜在治疗药物(如抗病毒药阿昔洛韦 Acyclovir, ACV)的效果,提供了一个强有力的工具。
本研究主要运用了以下几项关键技术方法:首先,利用人诱导多能干细胞(human induced pluripotent stem cells, hiPSCs)分化生成三维大脑类器官,随后将其解离并在二维条件下培养,形成包含多种神经细胞类型(包括自发产生的小胶质细胞)的dcOrgs模型。其次,通过携带绿色荧光蛋白(GFP)标签的重组HSV-1病毒株感染dcOrgs,建立神经炎症模型。再者,结合流式细胞术(Flow Cytometry),使用多种特异性抗体(如识别Aβ聚集体的阿杜卡单抗Aducanumab、识别Aβ单体的索拉珠单抗Solanezumab,以及识别不同磷酸化位点的Tau抗体等),在单细胞水平上定量检测细胞内Aβ、pTau等AD相关蛋白的丰度及其与病毒蛋白的共定位。此外,研究还通过酶联免疫吸附测定(ELISA)检测细胞培养上清液中分泌的Aβ亚型(Aβ40, Aβ42, Aβ38)水平。最后,利用批量RNA测序(Bulk RNA-seq)和单细胞RNA测序(scRNA-seq)技术,全面解析HSV-1感染前后dcOrgs的转录组变化,并通过基因集富集分析(Gene Set Enrichment Analysis, GSEA)探究差异表达基因与AD等疾病相关基因的关联。
研究结果
HSV-1感染在二维大脑类器官解离细胞中成功建立
研究人员成功从hiPSCs分化出包含神经元、星形胶质细胞和小胶质细胞(约7.1%的细胞表达小胶质细胞标记物P2RY12)的dcOrgs。用HSV-1-GFP病毒感染后,超过50%的细胞在23小时后显示GFP阳性,表明感染成功。而用抗病毒药物ACV处理或紫外线灭活(UV-inactivated)的病毒作为对照,则几乎看不到感染迹象。RNA测序数据显示,不同处理的dcOrgs样本间具有高度可重复性,且HSV-1感染引发了显著的转录组扰动。
细胞内Aβ聚集物与HSV-1高度共现,且主要由细胞自主效应驱动
通过多色流式细胞术分析发现,在HSV-1感染的dcOrgs中,识别Aβ聚集体的抗体(阿杜卡单抗)信号与病毒蛋白(GFP)信号呈强正相关,其相关性高于识别Aβ单体的抗体(索拉珠单抗)。这种强共定位主要出现在死亡细胞中。进一步分析同一感染样品内GFP阳性(HSV-1+)和GFP阴性(HSV-1-)的活细胞发现,HSV-1+细胞内的Aβ(无论聚集态还是单体)信号均显著高于HSV-1-细胞,表明Aβ的增多主要是由细胞自主(cell intrinsic)因素,即病毒在细胞内的活动所驱动,而非旁观者效应。作为对照,用甲型流感病毒(IAV)感染dcOrgs也观察到了Aβ与病毒的共定位,但其相关性模式与HSV-1不同(在活细胞中相关性更强),提示不同病毒可能通过不同机制影响Aβ代谢。
HSV-1感染导致Tau磷酸化增加并改变分泌性Aβ谱
流式分析还显示,HSV-1蛋白丰度与总Tau蛋白及在多个AD相关位点磷酸化的Tau(如pTau-181, pTau-217)丰度高度相关。对细胞培养上清液的检测发现,与模拟感染(Mock)的dcOrgs相比,HSV-1感染组的dcOrgs分泌的Aβ42、Aβ40和Aβ38总量均显著下降,但Aβ42/Aβ40的比值也显著降低。这表明感染可能改变了Aβ的产生或分泌过程,导致毒性更强的Aβ42相对比例减少(可能更多滞留于细胞内聚集)。而IAV感染虽然也降低了总Aβ分泌量,但并未改变Aβ42/Aβ40的比值。用ACV处理HSV-1感染的dcOrgs,可以部分挽救异常的Aβ分泌谱。
HSV-1感染改变dcOrgs细胞组成,模拟AD中的胶质增生和神经元丢失
通过流式细胞术检测15种细胞类型特异性标记物,研究人员评估了HSV-1感染对dcOrgs细胞群体比例的影响。结果显示,感染导致表达神经元标记物(如NeuN)的神经元比例下降,而表达胶质细胞标记物(如星形胶质细胞的GFAP、小胶质细胞的Iba1)的细胞比例上升。这种神经元丢失和胶质细胞(特别是反应性星形胶质细胞和小胶质细胞)增生的模式,与AD患者脑组织中所见的病理变化相似。ACV处理可以缓解这种细胞比例的变化。
转录组分析揭示HSV-1感染扰动AD相关基因网络
对批量RNA-seq数据进行差异表达基因分析和基因集富集分析发现,在HSV-1感染的dcOrgs中,与AD相关的全基因组关联研究(Genome-Wide Association Study, GWAS)基因被显著富集。这一富集在UV灭活病毒对照或IAV感染组中并未出现,在hiPSCs感染组中也未出现,提示该转录特征需要成熟的神经细胞环境(特别是胶质细胞)才能充分展现。此外,感染还显著激活了cGAS/STING、干扰素(IFN)应答、JAK/STAT等多个天然免疫信号通路。
单细胞转录组解析感染细胞的异质性及ACV的转录组挽救效应
通过scRNA-seq,研究人员将细胞分为“真实未感染”(来自Mock组)、“流产感染”(来自感染组但病毒转录本少)和“真实感染”(来自感染组且病毒转录本多)三类。分析显示,差异表达基因在“真实感染”与“真实未感染”细胞的比较中,对AD相关基因的富集最为显著。进一步分析ACV的治疗效果,研究人员将感染后因ACV处理而表达水平恢复至接近未感染状态的基因定义为“被挽救”(Rescued)基因,而将那些在ACV处理后表达变化反而加剧或出现新变化的基因定义为“加剧”(Exacerbated)基因。在两次独立实验中,均鉴定出了一批稳定被ACV挽救的基因,它们与神经发生、细胞粘附和线粒体功能等通路相关。
研究结论与意义
本研究成功建立并验证了一个基于人源二维大脑类器官解离细胞(dcOrgs)的高通量、定量化研究平台,用于模拟由HSV-1感染触发的AD相关神经炎症。该平台能够复现AD关键的分子病理特征,包括细胞内Aβ(特别是聚集形式)与病毒的共定位增加、多种pTau形式的累积、分泌性Aβ42/Aβ40比值降低、以及反应性胶质增生和神经元丢失的细胞比例变化。更重要的是,转录组学分析证实,HSV-1感染特异性地扰动了与AD遗传风险相关的基因网络,这为“感染假说”提供了来自人源细胞模型的直接分子证据。
该研究的核心意义在于其方法论上的创新和应用前景。首先,2D dcOrgs模型兼顾了人脑细胞的多样性和异质性,以及二维培养体系的高通量、标准化操作优势,使其非常适用于大规模的药物筛选和机理研究。其次,研究不仅验证了HSV-1感染可诱导AD样表型,还详细描绘了其背后的分子和细胞图谱,为理解病毒参与AD发病的机制提供了丰富线索。例如,细胞内Aβ聚集与病毒的高度共现及其细胞自主性,支持了Aβ可能作为先天性免疫应答一部分以对抗病原体,但过度反应最终导致病理沉积的假说。最后,研究证实抗病毒药物ACV能够在不同程度上逆转HSV-1感染引起的多种病理表型和转录组扰动,这为将阿昔洛韦或其前药伐昔洛韦(Valacyclovir, VCV)用于AD治疗(目前已有相关临床试验)提供了临床前实验依据,并揭示了其潜在的分子作用靶点。
总之,这项研究开发了一个强大且灵活的平台,它将有助于加速针对神经炎症的AD新药研发,深化对感染与神经退行性疾病关联的理解,并可能最终助力于开发出更有效的AD预防和治疗策略。

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