综述:利用mRNA和RaPID显示技术,结合翻译后修饰方法发现新肽

【字体: 时间:2026年03月12日 来源:Current Opinion in Biotechnology 7

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  mRNA显示技术通过遗传密码重编程实现大容量肽库筛选,但受限于核糖体翻译和酰基tRNA的可及性。本文综述了酶促、化学及联合后翻译修饰策略,有效扩展了肽类化学空间,为假天然产物肽类药物开发提供新途径。

  
张玉晨|杉博昭
中国农业大学生命科学技术学院农业微生物国家重点实验室,湖北洪山实验室,武汉430070,中国
肽类因其高靶点特异性和低毒性而成为有前景的治疗剂。最近在从头肽发现技术方面的进展使它们成为药物开发的吸引人的候选者。在筛选大型肽库的主要平台中,mRNA展示平台因其无与伦比的库规模(>1012个独特序列)及其与遗传密码重编程的兼容性而脱颖而出,这使得能够生成类似天然产物的肽。然而,对核糖体翻译和特定酰基-tRNA的依赖性对可访问的化学空间施加了显著的限制。本综述强调了利用翻译后修饰(PTMs)来克服这些限制的策略,从而大大扩展了肽的结构多样性。通过整合PTM–mRNA展示系统成功鉴定出有效的伪天然产物肽,突显了这种方法的治疗潜力。

引言

肽类是新兴的治疗方法,填补了小分子药物和抗体之间的空白1, 2。历史上,肽类药物是从天然存在的生物活性肽(如肽激素和肽类天然产物)开发而来的[3]。天然肽激素的结构由蛋白质生成氨基酸(pAAs)组成,这导致了较差的药代动力学特性,例如低代谢稳定性和有限的给药途径。因此,通常需要对这些分子进行结构修饰才能将其开发成治疗剂,例如已建立的胰岛素detemir和semaglutide等药物4, 5。另一方面,天然产物肽通常在侧链、主链甚至肽骨架方面包含各种非蛋白质生成结构[6]。这些结构特征不仅赋予了它们强大的生物活性,还赋予了有利的药代动力学特性,包括抗蛋白酶降解性和口服可用性。
除了偶然发现之外,从头靶向生物活性肽的发现最近越来越受到关注。高通量肽筛选技术的进步使得能够发现针对生物学相关蛋白质靶点的从头肽,包括以前无法成药的靶点[7]。通过代表性技术鉴定出了越来越多的肽候选物,包括化学合成的单珠单化合物库、DNA编码库(DELs)、肽和蛋白质的分裂-内含子环化以及肽展示方法8, 9, 10, 11, 12。在从头肽发现方法中,信使RNA(mRNA)展示技术以其巨大的库规模(通常超过1012个分子)而著称,这些分子来自随机模板mRNA 13, 14, 15。在体外重组系统中,通过mRNA模板翻译的帮助,非蛋白质生成构建块可以通过直接添加预酰基化的tRNA被整合到肽中,同时省略相应的占据密码子(图1a)。值得注意的是,杉博昭及其同事开发了随机非标准肽整合发现(RaPID)系统,该系统整合了体外遗传密码重编程和mRNA展示技术[16]。在RaPID系统中,通过弹性酶(flexizyme)制备的酰基-tRNA引入非蛋白质生成氨基酸(npAAs),这极大地增加了肽库的结构多样性[17]。RaPID系统的多功能性体现在其在快速简便地发现与药物开发相关的从头非标准肽方面的广泛应用。
技术进步,如RaPID系统和正交酰基-tRNA合成酶(ARSs),使得能够将各种非天然构建块整合到展示的肽中18, 19。这些包括,但不限于,N-甲基- [20]、N-烷基- [21]、β- [22, 23, 24]、γ- [25]、D-氨基酸26, 27,以及羟基28, 29、氨基羧酸[30]和氨基苯甲酸31, 32。尽管有这些发展,但由于两个主要挑战,通过mRNA展示可访问的化学空间仍然有限。首先,使用当前方法(如弹性酶、工程化的ARSs或化学合成)并不总能获得带有目标构建块的tRNA。例如,γ-氨基酸负载的tRNA会通过γ-氨基的亲核攻击迅速发生分子内内酰胺形成,除非γ-氨基被屏蔽[33]。其次,即使所需的酰基-tRNA可用,npAAs或其他修饰的整合也受到翻译机制本身的限制(图1b)。核糖体必须催化这些非天然构建块的缩合,而这往往成功率有限。虽然翻译起始可以容忍某些非天然构建块,如芳香族寡酰胺折叠体,但延伸过程则不那么宽容。尽管工程化核糖体偶尔能够实现特定npAAs的翻译,但其整合效率通常较低[34]。
克服这些挑战至关重要,因为扩展从头肽发现中的化学空间不仅扩大了可访问的序列多样性,还为靶肽配体赋予了更多类似药物的特性。虽然mRNA展示技术能够快速鉴定出针对治疗靶点的高亲和力肽配体,但所得肽通常需要广泛的结构优化,如MK-0616 [35]和zilucoplan [36]所示。为了解决这些限制,可以在翻译事件后对展示的肽进行化学和/或酶法衍生,以引入核糖体机制无法访问的非标准构建块和骨架结构。这些翻译后修饰(PTM)方法已成为核糖体整合的有希望的替代方案,提供了更大的化学空间(图1c)。将这些方法与体外展示结合使用,特别是能够编码npAAs的RaPID展示,可以在表型-基因型 conjugates格式下几乎无限地选择构建块,从而扩展化学多样性。除了mRNA和RaPID展示之外,这些方法还应用于核苷酸编码的质量库肽选择,包括噬菌体展示,以生成高度多样化的库11, 37, 38。在这篇综述中,我们总结了应用于mRNA展示的酶法、化学和协同PTM策略的最新进展,并讨论了与该平台整合的潜在新技术。

小节片段

mRNA展示与翻译后修饰酶的整合

蛋白质的PTM,如磷酸化、糖基化和缩合化,在多种细胞过程中起着重要作用。在次级代谢中,肽类天然产物表现出显著的结构多样性,通常包含非蛋白质生成元素。在核糖体合成和翻译后修饰的肽(RiPPs)的生物合成中,翻译机制产生一个前体肽,该前体肽经过广泛的酶法修饰以引入特殊结构

对mRNA展示中翻译后修饰酶的底物范围的调查

PTM酶的显著底物多样性虽然有利,但也给mRNA展示带来了技术挑战。理想情况下,设计库中的每个成员都应该经历定量修饰;因此,准确评估大型库中的酶活性对于有效设计至关重要。
对于许多PTM酶来说,整体肽序列对修饰效率的影响很小,这主要由修饰位点附近的残基决定。

在整合了翻译后修饰酶的mRNA展示中从头发现伪天然产物配体

对酶促PTM底物范围的全面理解使得能够构建用于mRNA展示工作流程的高度修饰肽的大规模库。在这些修饰中,缩合化特别有价值,因为它增强了分子的脂溶性——这是未修饰肽通常缺乏的属性。Goto、Suga及其同事表征了来自kawaguchipeptin生物合成途径的Trp-C3-缩合酶KgpF的底物范围,并利用它来

化学翻译后修饰与mRNA展示的整合

除了酶促PTM之外,化学和化学-酶策略作为补充工具,用于丰富mRNA展示库可用的化学空间。化学PTM策略在底物范围上提供了更大的灵活性(表1)。原则上,这些方法可以应用于几乎任何肽库,并且甚至可以与其他化学方法结合使用以扩展结构多样性。然而,由于mRNA展示系统中的mRNA和cDNA成分高度

体外表达的非蛋白质生成氨基酸肽的化学翻译后修饰

核糖体翻译需要酰基-tRNA,这可以通过使用氨基酰基-tRNA合成酶(AARS)/tRNA对原位生成,或者通过弹性酶等工具单独制备。然而,在某些情况下,所需的酰基-tRNA难以使用当前方法获得,或者即使酰基-tRNA可用,其中一些也难以被核糖体机制有效利用。
为了克服这些限制,一种策略是通过遗传密码重编程来整合npAAs

化学-酶促翻译后修饰及其在mRNA展示中的应用

虽然酶促PTM与mRNA展示相结合能够发现多样化的从头伪天然产物肽,但它需要精确定义底物范围并仔细优化酶混合物。在某些情况下,结合化学和酶学策略比依赖单一PTM方法提供了更灵活的方法。
Goto、Suga及其同事利用了含氮杂环化合物生物合成中的关键酶cyclohydratase PatD来合成一个

展望

mRNA展示,特别是RaPID,已成为快速发现针对广泛治疗相关蛋白质的从头肽的强大平台,包括那些以前被认为“无法成药的”蛋白质。然而,它对核糖体翻译的依赖性对可访问肽的化学多样性施加了显著的限制。在这篇综述中,我们强调了利用PTMs来克服这些限制的策略。成功鉴定出许多复杂的

资助

这项工作得到了中央高校基本研究经费(590226004,资助给Y.Z.)、湖北洪山实验室启动基金(105-11020132,资助给Y.Z.)和日本学术振兴会(JSPS)特别促进研究资助(JP20H05618,资助给H.S.)的支持。

CRediT作者贡献声明

张玉晨:撰写 – 审稿与编辑。杉博昭:撰写 – 审稿与编辑。

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的竞争性财务利益或个人关系可能会影响本文报告的工作。
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