肿瘤抑癌基因PTEN缺失驱动肿瘤发生的新机制:PTEN作为蛋白酪氨酸磷酸酶去磷酸化PI3KβY962调控PI3Kβ–EPHA2复合体信号,揭示p-PI3KβY962为新的成药靶点与生物标志物
《Cancer Discovery》:PTEN acts as a protein tyrosine phosphatase regulating PI3Kβ–EPHA2 interact...
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本文聚焦于PTEN缺失肿瘤的“不可成药”困境,揭示了一种超越传统PI3Kβ激酶活性的新机制。研究发现,PTEN作为一种蛋白酪氨酸磷酸酶,能去磷酸化PI3Kβ的酪氨酸962位点(p-PI3KβY962)。PTEN缺失导致p-PI3KβY962水平升高,驱动其与EPHA2和SRC形成三元复合物,进而激活致癌性的pERK/c-MYC和pAKT通路。该研究不仅开发了p-PI3KβY962特异性抗体作为潜在的临床生物标志物,还发现FDA已批准的SRC/EPHA2抑制剂达沙替尼可有效抑制p-PI3KβY962并阻断PTEN缺失肿瘤的生长。这为开发靶向p-PI3KβY962的疗法和开展达沙替尼的“老药新用”临床试验指明了新方向。
BioID蛋白质相互作用谱分析揭示PTEN缺失诱导PI3Kβ–EPHA2相互作用
为了探究PTEN缺失背景下PI3Kα和/或PI3Kβ是否形成新的相互作用,研究者在PTEN缺失的乳腺癌细胞系中进行了BioID邻近标记分析。通过对比PI3Kα和PI3Kβ的互作组,研究者发现这两种亚型在PTEN缺失的三阴性乳腺癌(TNBC)细胞中具有明显不同的相互作用网络,重叠度仅约30%。值得注意的是,在BT549和MDA-MB-468细胞中,EPHA2是唯一与PI3Kβ特异性相关且在质膜上共定位的相互作用蛋白。随后的免疫共沉淀实验进一步证实,在PTEN缺失的BT549和HCC70细胞中,内源性EPHA2与PI3Kβ(而非PI3Kα)存在相互作用。

有趣的是,在PTEN野生型细胞中,EPHA2与PI3Kα和PI3Kβ的相互作用程度相当,但在PTEN敲除细胞中,EPHA2与PI3Kβ的相互作用显著增强,与PI3Kα的相互作用则减弱。反之,在PTEN缺失的BT549细胞中恢复PTEN表达,则能显著削弱EPHA2与PI3Kβ的相互作用。这些结果共同表明,PTEN的缺失会特异性促进EPHA2与PI3Kβ之间更强的结合。
PTEN作为蛋白酪氨酸磷酸酶通过去磷酸化PI3Kβ酪氨酸-962位点调控PI3Kβ–EPHA2相互作用
研究进一步探究了PTEN缺失增强PI3Kβ–EPHA2相互作用的机制。除了其众所周知的脂质磷酸酶活性,PTEN还具有蛋白酪氨酸磷酸酶活性。研究者发现,在PTEN敲除的HEK293T细胞中,免疫沉淀的PI3Kβ(而非PI3Kα)的酪氨酸磷酸化水平显著升高。通过在PTEN缺失的BT549和HCC70细胞中稳定表达PTEN野生型或其功能缺失突变体(脂质磷酸酶活性缺陷的G129E、蛋白磷酸酶活性缺陷的Y138L、或双缺陷的C124S),实验证实,重新表达PTEN野生型或G129E突变体可显著降低PI3Kβ的酪氨酸磷酸化水平,而C124S或Y138L突变体则无此效果,说明PTEN通过其蛋白磷酸酶活性调控PI3Kβ的酪氨酸磷酸化。同时,底物捕获突变体PTEN-C124S与PI3Kβ的结合显著强于PTEN野生型,支持了PI3Kβ是PTEN的生理性底物。此外,表达PTEN野生型或G129E突变体能显著减弱PTEN缺失细胞中PI3Kβ与EPHA2的相互作用,而Y138L或C124S突变体则不能,表明PTEN作为蛋白磷酸酶通过调节PI3Kβ的磷酸化状态来调控其与EPHA2的互作。
为了找出PTEN调控的PI3Kβ具体磷酸化位点,研究者对来自PTEN敲除HEK293T细胞的Flag标记PI3Kβ进行了LC-MS/MS分析,检测到PI3Kβ在酪氨酸962位点和苏氨酸930位点的磷酸化。无细胞去磷酸化实验显示,PTEN野生型和G129E突变体(保留蛋白磷酸酶功能)能有效去磷酸化含有p-PI3KβY962的合成肽段,而蛋白磷酸酶缺陷的突变体Y138L和C124S则不能。值得注意的是,所有PTEN变体都无法去磷酸化含有pT930的肽段,表明PTEN是一种靶向PI3Kβ Y962位点的酪氨酸磷酸酶。
接下来,研究者利用模拟非磷酸化状态(T930A, Y962F, T930A/Y962F)或模拟磷酸化状态(T930E, Y962E, T930E/Y962E)的PI3Kβ突变体,探究这些位点的磷酸化如何影响PI3Kβ–EPHA2相互作用。在PTEN缺失的BT549细胞中,Y962F和T930A/Y962F突变体显著削弱了PI3Kβ与EPHA2的相互作用,而T930A突变体则无此影响。相反,在PTEN野生型的MDA-MB-231细胞中,表达磷酸化模拟突变体T930E或T930E/Y962E增强了PI3Kβ与EPHA2的相互作用。免疫荧光染色也证实,模拟磷酸化的PI3Kβ-Y962E突变体主要定位于质膜并与EPHA2共定位,而模拟非磷酸化的Y962F突变体则主要在胞质中。这些结果表明,PI3Kβ Y962位点的磷酸化增强了其与EPHA2的相互作用,并促进PI3Kβ在PTEN缺失细胞中的膜定位。总之,PTEN通过调控PI3Kβ Y962位点的磷酸化来控制PI3Kβ–EPHA2相互作用,PTEN缺失则通过允许PI3Kβ-Y962的持续性磷酸化来促进这种互作。

持续的PI3Kβ磷酸化支持PTEN缺失肿瘤的生长
为评估PTEN缺失诱导的PI3Kβ酪氨酸磷酸化在肿瘤发生中的功能重要性,研究者探究了磷酸化缺陷的PI3Kβ突变体能否模拟PI3Kβ基因敲除,从而抑制PTEN缺失肿瘤的生长。他们利用来源于同时缺失Pten和Trp53并敲除Pik3cb的乳腺癌基因工程小鼠模型的PPB原代肿瘤细胞,重建表达小鼠PI3Kβ野生型或磷酸化缺陷突变体。结果显示,与人类PTEN缺失癌细胞中的观察一致,添加回Y956F突变体(对应人类Y962F)或T924A/Y956F双突变体会减少PI3Kβ与EPHA2的结合。在体内,将工程化的PPB肿瘤细胞移植到小鼠乳腺脂肪垫中,PI3Kβ野生型恢复了PPB细胞的成瘤能力,而Y956F和T924A/Y956F突变体恢复肿瘤生长的能力显著减弱,并伴随Ki67染色的减少。类似地,在PTEN缺失的前列腺癌细胞PC3模型中,敲低内源性PI3Kβ后,过表达PI3Kβ野生型可促进肿瘤强劲生长,而非磷酸化的Y962F和T930A/Y962F突变体则显著削弱了这一促瘤效应,并降低了Ki67水平。这些数据表明,PI3Kβ的酪氨酸磷酸化在多种PTEN缺失的癌症模型中驱动肿瘤发生至关重要。
PI3Kβ-Y962磷酸化水平升高与乳腺癌和前列腺癌患者中的PTEN缺失密切相关
为了进一步评估PTEN介导的PI3KβY962磷酸化,研究者开发了一种可特异性识别人PI3Kβ Y962磷酸化位点(p-PI3KβY962)的多克隆抗体。该抗体在多种细胞系中可特异性检测过表达及内源性的p-PI3KβY962。在PTEN缺失的BT549细胞中过表达PTEN,或在PTEN野生型的MDA-MB-157细胞中敲除PTEN,分别显著降低了或增强了p-PI3KβY962水平,表明p-PI3KβY962受PTEN的紧密调控。
利用该特异性抗体,研究者在两组独立的人类癌症患者队列中分析了PTEN缺失与p-PI3KβY962水平之间的关系。在对10例携带PTEN突变的TNBC患者和10例PTEN野生型对照患者的匹配队列进行多重免疫组化分析时发现,PTEN突变肿瘤中p-PI3KβY962水平显著高于PTEN野生型对照组。线性回归分析进一步显示,在该TNBC队列中,PTEN表达与p-PI3KβY962水平呈强负相关。此外,在PTEN缺失的肿瘤组织内,PTEN完好的癌巢间质细胞的p-PI3KβY962水平远低于PTEN突变的肿瘤细胞,强化了临床样本中PTEN缺失与p-PI3KβY962升高