构建更安全、更逼真模拟COVID-19肺部病理的SARS-CoV-2生物安全鼠模型:基于N蛋白反式互补与组织特异性表达的创新策略

《Signal Transduction and Targeted Therapy》:A biosafe mouse model for SARS-CoV-2 infection that more realistically simulates COVID-19 symptoms

【字体: 时间:2026年03月17日 来源:Signal Transduction and Targeted Therapy 52.7

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  本研究建立了一种新型生物安全小鼠模型,通过K18-hACE2 KI小鼠背景结合组织特异性Cre-loxP系统,构建了可系统性(SA-N-hACE2)或肺特异性(Sftpc-N-hACE2)表达SARS-CoV-2核衣壳(N)蛋白的转基因小鼠。该模型对缺失N基因的SARS-CoV-2 ΔN/GFP-HiBiT复制子递送颗粒(RDPs)易感,可实现病毒高效复制但不产生感染性病毒颗粒。尤为重要的是,肺特异性N表达小鼠(Sftpc-N-hACE2)感染后仅发生肺部感染,其致死率和病理特征更接近人类COVID-19的临床表现,避免了传统K18-hACE2模型以中枢神经系统感染为主的致死弊端。此模型为在生物安全二级(BSL-2)环境下研究SARS-CoV-2致病机制、评估抗病毒药物及中和抗体提供了更安全、便捷且通真性更高的工具。

  
引言:寻求更佳COVID-19动物模型的必要性
由严重急性呼吸综合征冠状病毒2(SARS-CoV-2)引起的COVID-19疫情对全球健康构成了持续挑战。动物模型对于研究病毒致病机制和开发治疗策略至关重要。虽然表达人血管紧张素转换酶2(hACE2)的转基因小鼠(如K18-hACE2模型)被广泛用于研究重症COVID-19,但这些致死模型报道的死亡主要源于中枢神经系统感染,而人类患者的死亡主因是呼吸系统感染。此外,使用具有高传染性的野生型(WT)SARS-CoV-2进行实验需要在生物安全三级(BSL-3)实验室进行,极大地限制了研究范围和可及性。因此,开发一种更安全、更能真实模拟人类COVID-19肺部病理特征的动物模型具有迫切需求。
模型构建:组织特异性表达SARS-CoV-2 N蛋白的基因工程小鼠
本研究在K18-hACE2基因敲入(KI)小鼠的基础上,利用CRISPR-Cas9技术,将包含CAG启动子、loxP-stop-loxP(LSL)序列、SARS-CoV-2 N基因编码区、土拨鼠肝炎病毒转录后调控元件(WPRE)和多聚腺苷酸尾(polyA)的组件,靶向插入到小鼠9号染色体的Tigre基因位点,构建了条件性表达N蛋白的小鼠(N-hACE2小鼠)。
通过将该小鼠与两种不同的Cre驱动小鼠杂交,获得了两种衍生品系:
  1. 1.
    SA-N-hACE2小鼠:与表达广泛性、他莫昔芬(TAM)诱导型Cre重组酶(Rosa26-SA-CreERT2)的小鼠杂交获得。经TAM诱导后,SARS-CoV-2 N蛋白可在全身多组织中表达。
  2. 2.
    Sftpc-N-hACE2小鼠:与表达肺表面活性蛋白C(Sftpc)启动子驱动的iCre重组酶(Sftpc-IRES-iCre)的小鼠杂交获得。其SARS-CoV-2 N蛋白的表达严格局限于肺部。
核心工具:基于反式互补系统的非感染性病毒复制模型
研究采用了一种先前开发的SARS-CoV-2反式互补系统。该系统产生的病毒颗粒名为SARS-CoV-2 ΔN/GFP-HiBiT复制子递送颗粒(RDPs),其基因组缺失了编码核衣壳(N)蛋白的基因,并被替换为双报告基因GFP-HiBiT。这些RDPs只有在能表达SARS-CoV-2 N蛋白的细胞(如工程化的Caco-2-N细胞)或本研究所构建的转基因小鼠体内,才能完成复制周期。由于其基因组不完整,RDPs不能产生具有完整感染性的子代病毒,从而大大提升了实验的生物安全性。
模型验证:SA-N-hACE2与Sftpc-N-hACE2小鼠对RDPs的易感性
  • SA-N-hACE2小鼠的感染特征:经TAM诱导后,SA-N-hACE2小鼠经鼻感染不同剂量的SARS-CoV-2 ΔN/GFP-HiBiT RDPs。结果显示,小鼠出现轻微体重下降,并在肺和脑组织中均能检测到病毒载量。肺部病毒载量在感染后4天(4 dpi)达到峰值,随后下降。病理学分析显示,肺部出现从轻度到重度的进行性肺炎,表现为免疫细胞浸润增加和肺泡壁增厚,而脑组织未观察到明显的病理变化。
  • Sftpc-N-hACE2小鼠的感染特征:Sftpc-N-hACE2小鼠感染RDPs后,病毒载量在肺部被检测到,脑部完全无病毒复制,这证实了病毒感染的组织特异性与N蛋白的表达模式严格一致。与SA-N-hACE2小鼠类似,其肺部病毒载量也在4 dpi达到峰值,并伴随进行性加重的肺炎病理损伤,而脑部无病理变化。
突破性发现:Sftpc-N-hACE2小鼠模拟COVID-19致死性肺部感染
为探究是否可引发致死性疾病,研究人员用更高剂量(5 × 106TCID50)的RDPs感染Sftpc-N-hACE2小鼠。结果显示:
  1. 1.
    致死性:25%的小鼠因体重下降超过20%而达到安乐死标准或直接死亡。
  2. 2.
    病理进程:肺部损伤在7 dpi最严重,之后开始逐渐修复,至21 dpi基本恢复正常。病毒载量在7 dpi后持续下降,21 dpi时已检测不到。
  3. 3.
    无神经侵袭:在整个感染过程中,脑部始终未检测到病毒载量、病理损伤或病毒抗原,小胶质细胞/巨噬细胞也未出现明显激活,表明不存在神经炎症。
  4. 4.
    病毒定位:通过组织透明化与光片成像技术证实,SARS-CoV-2 N蛋白分布在肺上皮细胞中,RDPs的感染也局限于肺部。
    这些特征更真实地模拟了人类重症COVID-19的临床进程,即感染主要局限于肺部,死亡由严重的肺部病理和呼吸衰竭导致,而非传统小鼠模型中常见的神经侵袭。
免疫应答分析:揭示模拟临床的炎症与干扰素特征
对感染小鼠肺组织的转录组和免疫组化分析揭示了动态的免疫反应:
  • 免疫细胞浸润:感染早期(2 dpi),中性粒细胞(Ly6G+)和巨噬细胞(CD68+)迅速增加;4 dpi时,T细胞(CD3+CD4+, CD3+CD8+)和B细胞(CD19+)显著增多;7 dpi时,淋巴细胞持续增加。
  • 干扰素与炎症反应:RNA测序(RNA-seq)显示,感染早期(2 dpi),I型干扰素刺激基因(ISGs)如Ifit1, Oas2, Mx1等显著上调,启动抗病毒程序。随后(4-7 dpi),干扰素信号相关基因(如Ifnar1, Stat1)和炎症因子持续高表达。基因集富集分析(GSEA)表明,RIG-I样受体、JAK-STAT、NF-κB、TNF等促炎信号通路被激活,而TGF-β、Wnt等与组织修复相关的通路被抑制。这种早期干扰素反应相对受限、后期炎症持续加剧的特征,与重症COVID-19患者体内观察到的“炎症失衡”现象相似。
  • 脑部免疫反应轻微:SA-N-hACE2小鼠脑部有轻微的干扰素和炎症相关基因上调,而Sftpc-N-hACE2小鼠脑部则无显著变化,进一步印证了其感染局限在肺部的特性。
应用价值:用于抗病毒药物与中和抗体评估
为验证该模型的实用性,研究测试了抗病毒药物尼马特雷韦(Nirmatrelvir, NMV)和一种中和抗体(7B3)在SA-N-hACE2和Sftpc-N-hACE2小鼠中的效果,并与感染野生型SARS-CoV-2的K18-hACE2 KI小鼠进行对比。
结果显示,无论是NMV治疗还是7B3给药,均能显著降低两种新型模型小鼠肺部的病毒载量,并有效减轻肺部炎症病理损伤。其药效评估结果与在野生型病毒感染的K18-hACE2 KI模型中观察到的趋势一致,证明该模型可用于抗SARS-CoV-2药物的高通量筛选和效力评估。
安全性与优势
该模型具有多重安全优势:RDPs依赖外源N蛋白进行复制,在无N蛋白表达的小鼠或环境中无法建立感染和传播;测序验证未发生N基因回复突变;所有RDPs感染实验均在生物安全二级(ABSL-2)实验室完成,突破了野生型病毒必须在BSL-3实验室操作的限制。
讨论与展望
该研究成功构建了两种基于SARS-CoV-2 N蛋白反式互补系统的生物安全小鼠模型。其中,Sftpc-N-hACE2小鼠模型尤其具有价值,它精准模拟了人类COVID-19以肺部感染为核心、可进展为致死性肺炎的临床与病理特征,避免了传统模型因神经侵袭致死的偏差,为研究SARS-CoV-2的肺部致病机制提供了更真实的工具。未来,可通过结合更多组织特异性的Cre驱动小鼠,将N蛋白表达限制在特定细胞或器官,用以研究SARS-CoV-2感染如何导致特定组织损伤或长新冠(Long COVID)症状。同时,该模型也为在更普及的实验室条件下,安全、高效地进行抗病毒药物和疫苗评估开辟了新路径。
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