《Journal of Advanced Research》:The pleiotropic effects of a single transcription factor underpin trade-offs associated with insecticide resistance in whitefly
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为解决害虫抗药性伴随的“受益-代价”权衡机制不清的难题,研究人员以烟粉虱为模型,聚焦细胞色素P450基因CYP6EM1介导的噻虫胺抗性及其繁殖力代价,揭示了GPCR-MAPK信号轴通过磷酸化激活转录因子E75,进而“一石二鸟”地调控抗性基因CYP6EM1并抑制生殖关键基因Bg,阐明了抗性进化中适应性权衡的分子基础,为可持续害虫治理提供了新见解。
在全球农业面临日益严重的害虫抗药性挑战的背景下,烟粉虱(Bemisia tabaci)作为一种世界性的毁灭性作物害虫,其对新烟碱类杀虫剂(如噻虫胺)产生的抗性已成为威胁农作物产量和生态安全的重要问题。令人困惑的是,害虫在进化出抗药性的同时,往往伴随着生存和繁殖能力的下降,即存在“受益-代价”的权衡。然而,这种权衡背后具体的分子遗传机制长期以来如同一个“黑箱”,科学家们对其知之甚少。是能量资源的重新分配导致了“顾此失彼”,还是某个关键分子“身兼数职”引发了连锁反应?深入揭示这一机制,对于理解抗性进化规律、制定可持续的害虫抗性管理策略具有迫切的理论与实践意义。近期,一项发表在《Journal of Advanced Research》上的研究,为我们揭开了这层神秘面纱的一角。
为了阐明这一问题,研究人员以烟粉虱MED/Q生物型为研究对象,综合运用了生物测定、生命表分析、RNA干扰、双荧光素酶报告基因检测、酵母单杂交、电泳迁移率变动分析、免疫共沉淀、蛋白质印迹、免疫荧光、分子对接与动力学模拟、重组P450酶体外代谢以及UPLC-MS/MS分析等一系列关键技术方法。研究涉及的样本包括一个长期未接触农药的敏感品系和五个来自中国不同省份的田间噻虫胺抗性品系。
研究结果
1. 烟粉虱P450基因CYP6EM1与噻虫胺抗性相关
研究人员首先通过生物测定确认了田间烟粉虱对噻虫胺存在15-60倍的抗性。分子分析发现,抗性品系中细胞色素P450基因CYP6EM1的mRNA和蛋白水平均显著上调,且在噻虫胺胁迫下其表达被进一步诱导。免疫荧光实验显示CYP6EM1蛋白在抗性品系中肠(主要解毒器官)中富集。分子对接和分子动力学模拟预测CYP6EM1与噻虫胺能以高亲和力结合,关键结合位点为Ala-50、Phe-59、Ile-56和Thr-223。体外酶活实验证实,重组CYP6EM1蛋白能代谢噻虫胺,而这些关键位点的突变会显著削弱其代谢能力。在体实验中,利用RNA干扰(RNAi)技术敲低CYP6EM1表达,或利用GAL4/UAS系统在果蝇中肠异位过表达CYP6EM1,均能分别显著增加或降低昆虫对噻虫胺的敏感性。这些结果综合证明CYP6EM1是介导烟粉虱噻虫胺抗性的关键P450基因。
2. 转录因子E75介导CYP6EM1的过表达,从而赋予噻虫胺抗性
为探究CYP6EM1上调的机制,研究人员通过双荧光素酶报告基因系统从18个候选转录因子中筛选出能强烈激活CYP6EM1启动子的因子,发现核受体转录因子E75、E78和SEV作用显著。进一步在抗性品系中验证,只有E75在mRNA和蛋白水平上持续高表达。RNAi敲低E75后,CYP6EM1的表达下降,烟粉虱对噻虫胺的敏感性恢复。通过启动子缺失分析、EMSA和酵母单杂交实验,研究人员在CYP6EM1启动子区(-767至-757 bp)鉴定出一个关键的E75结合位点(5′-TGTCTTAGAT-3′),并证实E75能直接结合该位点以激活CYP6EM1转录。因此,E75是正向调控CYP6EM1、导致噻虫胺抗性的关键转录因子。
3. ERK和p38 MAPK信号通路通过磷酸化激活E75转录
MAPK(丝裂原活化蛋白激酶)通路常通过磷酸化激活下游转录因子。本研究发现,在抗性品系中,MAPK家族成员ERK和p38的mRNA、总蛋白及磷酸化水平均显著上调。RNAi敲低ERK或p38后,不仅增加了烟粉虱对噻虫胺的敏感性,还降低了E75的磷酸化水平和蛋白表达。免疫共沉淀实验证实了磷酸化的ERK/p38与磷酸化的E75在体内存在直接互作。体外Phos-tag激酶实验进一步表明,ERK能直接磷酸化E75,而p38可能以间接方式参与E75的磷酸化调控。这些结果证明,ERK和p38 MAPK信号通路通过磷酸化激活E75,从而介导下游基因的调控。
4. MAPK介导的CYP6EM1噻虫胺抗性与繁殖力代价密切相关
为评估抗性带来的适应性代价,研究人员采用“两性生命表”方法系统比较了敏感与抗性品系的生活史性状。结果显示,抗性品系(R#1和R#2)在发育周期延长、若虫存活率降低、成虫寿命缩短的同时,其产卵期、单雌产卵量(繁殖力)和净生殖率(R0)均显著下降,相对适合度(Rf)仅为敏感品系的0.51-0.82。这表明CYP6EM1介导的噻虫胺抗性伴随着显著的繁殖力代价。
5. MAPK激活的E75负向调控Bg表达,导致繁殖力代价
之前的研究曾发现卵子发生关键基因Ex、Va、Bg、Vg与抗性繁殖代价相关。本研究聚焦发现,RNAi敲低E75能特异性地上调Bg蛋白的表达,而在抗性品系中Bg蛋白本底水平较低。通过启动子分析、EMSA和酵母单杂交,研究人员在Bg基因启动子区鉴定出E75的结合位点(5′-CAGAAGCTCA-3′),并证实E75能直接结合该位点。功能实验表明,敲低E75能显著提高抗性雌虫的产卵量。同时,敲低ERK或p38也能上调Bg蛋白水平。这些证据表明,被MAPK磷酸化激活的E75,能够直接结合并抑制关键卵子发生基因Bg的表达,从而导致繁殖力下降。
6. NPFF2介导噻虫胺抗性与繁殖代价之间的权衡
为寻找MAPK-E75通路的上游激活因子,研究关注了跨膜G蛋白偶联受体(GPCR)神经肽FF受体2(NPFF2)。使用GPCR抑制剂苏拉明处理,或通过RNAi敲低NPFF2,均能降低p38、ERK的磷酸化水平,并下调E75和CYP6EM1的表达,同时上调Bg的表达。在抗性品系中,NPFF2的总蛋白及磷酸化水平也显著升高。这些结果证明,NPFF2作为上游受体,触发了MAPK(p38/ERK)信号通路的激活,进而通过E75协调了对抗性基因CYP6EM1的正向调控和对生殖基因Bg的负向调控。
结论与意义
本研究系统阐明了烟粉虱中由单一转录因子E75的多效性作用所支撑的杀虫剂抗性-繁殖力权衡的分子机制。具体而言,跨膜受体NPFF2感知噻虫胺胁迫后,激活下游MAPK(p38和ERK)信号通路。磷酸化的MAPK进而磷酸化并激活转录因子E75。激活态的E75发挥“一石二鸟”的双重功能:一方面,它结合并激活细胞色素P450抗性基因CYP6EM1的启动子,促进其表达,从而增强对噻虫胺的代谢解毒能力,产生抗性;另一方面,它又结合并抑制卵子发生关键基因Bg的启动子,压制其表达,导致昆虫繁殖能力下降。这条“NPFF2-MAPK-E75”信号轴构成了一个精巧的cis-trans调控网络,完美诠释了“受益-代价”权衡的分子基础——即抗性的获得是以牺牲繁殖适合度为代价的。
这项研究的意义重大。首先,在理论层面,它首次完整揭示了一个由GPCR-MAPK-E75信号轴介导的、在害虫抗药性进化中普遍存在的适应性权衡的分子通路,为理解抗性进化的遗传约束和代价机制提供了范式。其次,在应用层面,该研究鉴定出的关键节点,如受体NPFF2、激酶p38/ERK、转录因子E75及其调控的靶基因CYP6EM1和Bg,均为开发新型害虫治理策略提供了潜在的分子靶标。例如,针对这些节点设计特异性抑制剂或干扰策略,可能能够打破害虫的抗性,或者利用其固有的适合度代价来延缓抗性的发展,从而为实现农业害虫的可持续绿色防控开辟新的思路。