甜樱桃(Prunus avium L.)以其鲜艳的颜色、甜美的风味和高营养价值而著称。它富含蛋白质、有机酸、必需矿物质以及人体所需的各种维生素(Shen, Jiang, Shao, Wu, & Chen, 2024)。然而,甜樱桃具有较高的代谢活性,采后保质期短,在储存和运输过程中容易发生脱水、皱缩、果柄脱落、酶促褐变等品质下降现象,导致较大的采后损失(Correia, Schouten, Silva, & Goncalves, 2017; Zheng et al., 2024)。此外,由于果皮薄且多汁,甜樱桃极易变质,导致收获后品质迅速下降。微生物感染是果实品质下降的主要原因,与腐烂密切相关(Kusstatscher et al., 2020)。一些研究表明,真菌腐烂是果实变质的主要原因,主要由青霉菌、灰葡萄孢和念珠菌等属引起(Bilgin & Akocak, 2024; Conte, Scrocco, Lecce, Mastromatteo, & Del Nobile, 2009)。这些微生物会导致甜樱桃、梨等水果软化并腐烂,尤其是在长时间储存时。例如,青霉菌已被确定为最重要的腐败细菌(Iqbal et al., 2024)。Peng等人(2023)发现青霉菌可以通过果皮上的伤口或孔洞进入果实,感染柑橘类水果、杨梅和樱桃等多种水果。此外,丁香假单胞菌是一种常见的植物病原体,其引起的细菌性溃疡病是甜樱桃组织腐烂的重要原因(Zhang & Xie, 2021)。因此,收获后需要对甜樱桃进行保鲜处理,以保持其品质并延长保质期。
目前,有多种方法可用于甜樱桃的保鲜,如水冷、冷藏、杀菌剂、可食用涂层和 modified atmosphere packaging(Bilgin & Akocak, 2024; Correia et al., 2017; Serradilla et al., 2013)。例如,Shen等人(2024)使用具有预冷抗菌效果的等离子体活化冰浆来抑制甜樱桃表面的真菌生长并延长保质期。Bilgin和Akocak(2024)使用低压UVC和发光二极管对樱桃进行照射,并测定了果实表面好氧中温菌、霉菌和酵母的总数,目的是减少采后变质并延长甜樱桃的保质期。
含有羟丙基甲基纤维素、蜂蜡和精油的食用纳米乳液涂层在应用于甜樱桃时,对食源性病原体大肠杆菌和黑曲霉具有抗菌作用(Iqbal et al., 2024)。无论采用哪种方法,对甜樱桃在储存期间的抗菌效果都不完全。这些方法要么抑制特定细菌或真菌的生长和繁殖,要么仅以总体方式计算菌落总数。这使得难以准确抑制大多数腐败细菌的生长。这主要是由于储存过程中甜樱桃表面生态系统的复杂性和异质性,以及大量未鉴定的微生物。
宏基因组测序已成为研究微生物群落及其多样性和功能的强大工具。它提供了关于微生物的广泛基因组信息,能够更准确地识别低丰度物种(Fu et al., 2021; Saheb Kashaf et al., 2022; Yu et al., 2024)。目前,宏基因组测序常用于研究发酵过程中的微生物动态变化。例如,通过对黄酒发酵剂的宏基因组测序,研究了参与发酵的微生物种类及其功能基因注释,并阐明了合成关键风味化合物的代谢途径(Yu et al., 2024)。Liu等人(2024)研究了不同发酵期间发酵辣椒的风味、挥发性香气和微生物群落的变化,以及这些因素之间的相互关系。他们还通过宏基因组分析比较了辣椒的微生物群落和功能注释。宏基因组学和代谢组学方法也被用于研究Trinitario可可六天自发发酵过程中的微生物和代谢物的动态特征(Chang et al., 2024)。然而,很少有研究使用宏基因组测序来研究水果和蔬菜采后储存过程中的微生物多样性和功能注释。因此,本研究的目的是探讨甜樱桃采后储存过程中微生物群落和功能注释的差异,为开发新的高效抗菌剂提供理论基础。