将rVWF片段rD'D3与白蛋白融合后,通过清除受体Stabilin-2的作用可以减少其被内化的过程

《Blood Cells, Molecules, and Diseases》:Albumin fusion of the rVWF fragment rD'D3 reduces internalisation by clearance receptor Stabilin-2

【字体: 时间:2026年03月24日 来源:Blood Cells, Molecules, and Diseases 2.1

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  重组人血白蛋白融合蛋白rD'D3-FP通过阻断稳定素-2(STAB2)介导的降解和促进 neonatal Fc受体(FcRn)介导的循环,显著延长了共给药的凝血因子VIII(FVIII)的半衰期。研究揭示了蛋白与STAB2的pH依赖性结合特性,以及在共表达STAB2和FcRn的细胞中通过Rab11+回收体逃逸降解的机制。通过比较FVIII敲除、FcRn敲除及转基因小鼠的药代动力学,发现FcRn在延长rD'D3-FP半衰期中作用有限,但白蛋白融合可能抑制其他清除途径。本研究为开发长效凝血因子疗法提供了新的机制见解。

  
金·G·刘(Kim G. Lieu)| 萨宾·佩斯特尔(Sabine Pestel)| 马海里·麦克斯韦尔(Mhairi Maxwell)| 刘宇涵(Yu-Han Liu)| 格雷格·T·巴斯(Greg T. Bass)| 戴云(Yun Dai)| 伊莎贝尔·格劳泽(Isabelle Glauser)| 马可·霍夫曼(Marco Hofmann)| 阿德里安娜·巴兹·莫雷利(Adriana Baz Morelli)| 赵妮·查(Jenny Chia)| 安妮·M·维尔哈根(Anne M. Verhagen)
CSL Innovation Pty Ltd,澳大利亚维多利亚州帕克维尔(Parkville, Victoria, Australia)

摘要

我们开发了一种重组VWF D’D3白蛋白融合蛋白(rD'D3-FP),以延长共同给药的凝血因子VIII(FVIII)的半衰期,用于治疗A型血友病。我们研究了rD'D3与白蛋白融合对Stabilin-2(STAB2)清除受体通路的影响,以及通过新生儿Fc受体FcRn介导的rD'D3-FP回收机制,这两种机制可能有助于延长rD'D3-FP的半衰期。利用过表达STAB2的人类293-F细胞或与FcRn共表达的细胞,通过流式细胞术和共聚焦显微镜观察了荧光标记的rD'D3-FP的结合和细胞内运输情况。还评估了rD'D3-FP在FVIII敲除(KO)小鼠、FcRn敲除(FcRn KO)小鼠以及hFcRn Tg32转基因小鼠中的药代动力学。研究表明,rD'D3-FP与其His标签版本的rD'D3在中性pH值下与STAB2的结合最为牢固,但在酸性条件下会解离。虽然白蛋白融合似乎会阻碍rD'D3-FP与STAB2的结合,但在体外系统中观察到STAB2介导的rD'D3-FP内吞作用和溶酶体降解。通过同时表达STAB2和FcRn,可以实现rD'D3-FP向Rab11+回收内体的转移。与仅表达His标签的rD'D3相比,rD'D3-FP的药代动力学显著改善;然而,在hFcRn Tg32小鼠中,rD'D3-FP的半衰期仅比FcRn KO小鼠或野生型小鼠略有延长。尽管FcRn在延长rD'D3-FP半衰期中可能起次要作用,但白蛋白融合可能会抑制其他清除机制。因此,我们提出了几种可能有助于高等物种中rD'D3-FP半衰期延长的独立机制。

引言

A型血友病(HA)是一种X连锁隐性遗传性出血性疾病,表现为凝血因子VIII(FVIII)功能异常或缺乏,发病率约为每5000名男性新生儿中有1例[1]。在血管损伤部位,活化的FVIII(FVIIIa)与活化的因子IX(FIXa)结合形成内源性tenase复合物,从而激活因子X(FX),生成凝血酶并形成纤维蛋白凝块[2]。严重HA患者(血浆FVIII活性<1%)常出现频繁、自发的无法控制的出血,尤其是关节出血,导致慢性关节病和严重的身体残疾[1]。患者还会经历疼痛、不适、自我护理问题、焦虑和抑郁,从而影响生活质量[3]。HA患者可以通过预防性或按需治疗来治疗,治疗方法包括输注血浆来源的FVIII(pdFVIII)或重组FVIII(rVIII)[1]。然而,pdFVIII和rVIII的半衰期相对较短(约12小时[4]),因此需要每周注射多次,并且由于促血栓形成风险,剂量必须严格控制。大约25-35%的HA患者会发展出FVIII抑制剂[5],[6],这需要寻找替代疗法。一种新型疗法是双特异性单克隆抗体emicizumab,它可以绕过FVIII的作用机制[7],[8]。
在循环系统中,约98%的FVIII与VWF的D’D3结构域通过非共价键结合形成复合物,使FVIII的半衰期延长至12小时,而缺乏VWF时仅为2小时[9],[10]。VWF通过保护FVIII免受蛋白水解降解、不受控制的激活以及与脂蛋白相关清除受体的相互作用,在维持FVIII稳定性和止血过程中起关键作用[10],[11]。延长FVIII半衰期的方法之一是使用重组融合蛋白rFVIIIFc-VWF-XTEN(BIVV001),该蛋白由VWF的D’D3结构域与FVIII-Fc(FVIII与免疫球蛋白G的Fc部分)以及两个XTEN模块融合而成[12]。我们描述了一种重组VWF D’D3白蛋白融合蛋白(rD'D3-FP)及其变体,这些变体具有增强的FVIII结合能力,在多种动物模型中能够延长共同给药的重组单链B结构域缺失FVIII(rVIII-SingleChain)的半衰期[13],[14]。由于rD'D3缺乏促血栓形成区域,其剂量可以高于血浆来源的VWF(pdVWF)或重组VWF(rVWF)[13]。然而,白蛋白融合对rD'D3-FP的清除和回收机制以及半衰期延长的影响尚不完全清楚。
多项全基因组关联研究(GWAS)发现了与FVIII和/或VWF水平相关的清除受体基因,包括SCARA5(Scavenger受体A类,成员5)、STAB2(stabilin-2)、SIGLEC5(唾液酸结合免疫球蛋白样凝集素5)和CLEC4M(C型凝集素结构域家族4,成员M)[15],[16],[17]。后续研究表明,这些清除受体参与血浆来源的VWF(pdVWF)的内吞和降解,从而可能影响VWF的半衰期[18],[19],[20],[21],[22]。其中,STAB2被认为在调节VWF/FVIII水平以及VWF/FVIII复合物的免疫反应中起重要作用[18]。
STAB2是一种H类清除受体,对肝素、透明质酸、糖胺聚糖和磷脂酰丝氨酸等多阴离子分子的溶酶体降解和清除至关重要[23],[24],[25],[26],[27],[28]。STAB2是一种I型跨膜糖蛋白,存在两种主要异构体,具有相似的配体结合特性:(1) 315-kDa的异构体(315 kDa-STAB2)和(2) 190-kDa的异构体,后者是通过Ser1136位点的蛋白水解产生的[29]。有趣的是,190-kDa-STAB2的表达水平是其全长异构体的两倍[30]。它主要表达在肝脏、脾脏和淋巴窦内皮细胞上,前者被认为是VWF和FVIII清除的主要场所[31]。
在这里,我们发现rD'D3-FP与STAB2的结合是通过融合蛋白的D’D3部分介导的,这促进了其在体内的内吞和随后的溶酶体降解。然而,白蛋白融合似乎通过使rD'D3与共表达FcRn和STAB2的细胞中的新生儿Fc受体FcRn结合,将rD'D3-FP导向内吞回收途径。白蛋白融合还可能阻碍rD'D3-FP与STAB2的结合,从而影响其清除。因此,我们确定了两种可能有助于高等物种中rD'D3-FP半衰期延长的机制。

部分摘录

重组蛋白的表达、纯化和标记

重组人血清白蛋白(rHSA)在人类FreeStyle? 293-F细胞(Life Technologies)中表达,并按照先前描述的方法进行纯化[32]。重组蛋白rD'D3-FP、rVWF-FP和rD'D3-8His在中国仓鼠卵巢K1细胞中表达,并按照先前描述的方法进行纯化[13]。rVIII-SingleChain(AFSTYLA?)由CSL Behring(Marburg)提供。对于共聚焦成像实验,蛋白质被标记为Alexa Fluor? 488(AF488)(Life Technologies, A20181)或Alexa Fluor? 568(AF568)

STAB2介导rD'D3-FP的内吞

多种清除受体已被证实参与pdVWF的清除,包括SCARA5[17],[19]、STAB2[15],[16]、SIGLEC5[22]、SIGLEC7[35]和CLEC4M[15],[16],[17],[18],[19],[20],[21],[22]。为了识别rD'D3-FP的潜在清除受体,将人类FreeStyle 293-F(293-F)细胞短暂转染以表达SIGLEC5、SIGLEC7、SCARA5、CLEC4M或STAB2的315 kDa异构体(315 kDa-STAB2),或者转染空白对照细胞。细胞裂解物的Western分析证实了这一点

讨论

我们之前描述了一种重组VWF D’D3白蛋白融合分子rD'D3-FP,在小鼠、大鼠、兔子和恒河猴中的半衰期比pdVWF延长了8倍以上[13]。重要的是,rD'D3-FP与rVIII-SingleChain共同给药时,其半衰期比单独使用rVIII-SingleChain延长了4.3-5倍[13],表明rD'D3-FP可能是治疗HA的有希望的候选药物。在本研究中,我们

CRediT作者贡献声明

金·G·刘(Kim G. Lieu):撰写 – 审稿与编辑、初稿撰写、方法学设计、实验研究、数据分析、概念构思。萨宾·佩斯特尔(Sabine Pestel):撰写 – 审稿与编辑、初稿撰写、方法学设计、实验研究、数据分析。马海里·麦克斯韦尔(Mhairi Maxwell):方法学设计、实验研究、数据分析。刘宇涵(Yu-Han Liu):方法学设计、实验研究、数据分析。格雷格·T·巴斯(Greg T. Bass):数据分析。戴云(Yun Dai):实验研究。伊莎贝尔·格劳泽(Isabelle Glauser):实验研究。马可·霍夫曼(Marco Hofmann):实验研究。阿德里安娜·巴兹(Adriana Baz):

利益冲突声明

所有作者均为CSL Pty Ltd的员工和/或股东。

致谢

我们感谢CSL Research的蛋白质表达和蛋白质生物化学团队在重组蛋白的表达和纯化方面的支持;感谢Matthew P. Hardy在CSL Research生成STAB2表达载体;感谢Shirley Taylor、SooSan Wan和Rajesh Ghai在重组蛋白的荧光标记方面的协助;同时感谢墨尔本大学的生物光学显微镜平台,那里进行了成像实验。
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