应用可行性PCR技术检测饮用水源中人类肠道病毒的衣壳完整性以及这些病毒在地表水中的持续存在情况

《Science of The Total Environment》:Application of viability PCR to investigate the capsid integrity of human enteric viruses in drinking water sources and the persistence of those viruses in surface waters

【字体: 时间:2026年03月28日 来源:Science of The Total Environment 8

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  通过改进的PMAxx-Enhancer-PCR方法分析饮用水源中人类肠道病毒及甜椒轻斑病毒(PMMoV)的 capsid 完整性,发现阳光是影响病毒 capsid 完整性的主要环境胁迫,而PMMoV因 capsid 更 robust成为更优的指示病毒。摘要分隔符

白川大樹|白崎信隆|折木智史|松下卓|松井良彦
北海道大学工学部环境工程系,日本札幌N13W8,060-8628

摘要

本研究通过使用改进的丙啶单氮化物(PMAxx-Enhancer-PCR)进行存活性PCR检测,研究了饮用水源中具有完整衣壳(即具有潜在传染性的)本土人类肠道病毒的存在情况。将单独使用PCR与PMAxx-Enhancer-PCR得到的结果进行比较后发现,饮用水源中的腺病毒、诺如病毒GI型和轮状病毒的衣壳往往受损,因此失去传染性。相比之下,星状病毒、诺如病毒GII型和肠道病毒的衣壳保持完整,具有潜在传染性。为阐明病毒衣壳受损的主要原因,我们进一步通过病毒添加实验、单独使用PCR以及PMAxx-Enhancer-PCR,研究了环境因素(水温、颗粒物、酶活性和阳光)对作为饮用水源的地表水中病毒存活性的影响。当仅考虑水温、颗粒物和酶活性这些因素时,使用PMAxx-Enhancer-PCR得到的病毒衰减率常数与单独使用PCR得到的结果相当。然而,当存在阳光等其他因素时,PMAxx-Enhancer-PCR显示的衰减率常数更大。因此,阳光可能是影响饮用水源中本土人类肠道病毒衣壳完整性的关键环境因素。无论使用单独的PCR还是PMAxx-Enhancer-PCR,辣椒轻斑病毒(PMMoV)在饮用水源中的浓度都比人类肠道病毒高100多倍,这表明PMMoV适合作为评估实际饮用水处理厂病毒去除效果的替代指标。实验表明,由于PMMoV具有更坚固的衣壳结构,其对环境因素的抵抗力更强,这可能是其在饮用水源中高浓度存在的原因。

引言

由人类肠道病毒引起的传染病可以通过消化道感染,并通过感染者粪便排出,是与饮用水相关的最常见和最广泛的健康风险之一(WHO,2022年)。减少饮用水中人类肠道病毒感染风险的措施应侧重于防止水源污染,随后进行充分的饮用水处理以去除和灭活病毒(WHO,2022年)。因此,研究饮用水源中传染性人类肠道病毒的存在情况对于确定水源污染程度以及制定有效的饮用水处理方案以减轻水传播疾病带来的健康风险至关重要(WHO,2022年)。
人们广泛使用实时聚合酶链反应(real-time PCR)(Sylvestre等人,2021年;Miura等人,2024年)来检测饮用水源中的人类肠道病毒,因为PCR方法快速、灵敏度高且特异性强(Hamza等人,2011a年)。然而,除非目标核酸部分受损,否则PCR既能检测到具有传染性的病毒,也能检测到因衣壳损伤而失活的病毒(Parshionikar等人,2010年;Prevost等人,2016年;Shirasaki等人,2020年)。因此,单独使用PCR通常无法区分传染性病毒和失活病毒。
基于细胞培养的检测方法(如空斑形成单位(PFU)检测法)常用于检测和定量饮用水源中的传染性人类肠道病毒(Lodder等人,2010年;Sylvestre等人,2021年),但这些方法耗时且劳动强度大(Hamza等人,2011a年)。此外,某些人类肠道病毒(如人类诺如病毒HuNoV)难以在细胞培养中生长,因此这些方法也不适用(Hamza等人,2011a年)。
将PCR与插入染料预处理(存活性PCR)结合使用的方法因其在区分传染性病毒和失活病毒方面的有效性而受到广泛关注(Parshionikar等人,2010年;Prevost等人,2016年;Shirasaki等人,2020年)。在存活性PCR方法中,插入染料无法穿透具有完整衣壳的病毒,但可以穿透衣壳受损的失活病毒,与病毒核酸反应并抑制其后续的(RT-)PCR扩增;因此,该方法可用于评估病毒衣壳的完整性。此外,存活性PCR仅需在PCR前进行插入染料预处理,不依赖于细胞培养,因此比基于细胞培养的方法更简单、更快捷,也适用于那些尚未建立高效细胞培养系统的病毒(如HuNoV,Leifels等人,2021年;Canh等人,2022年)。
最近,一些研究小组使用乙锭单氮化物、丙啶单氮化物(PMA)和-二氯二胺铂(cis-dichlorodiammineplatinum)进行存活性PCR检测,发现某些通过单独PCR检测到的肠道病毒具有完整衣壳,具有潜在传染性(Leifels等人,2016年;Prevost等人,2016年;Canh等人,2021年)。然而,存活性PCR的效果可能受插入染料的类型和浓度、水质以及病毒类型和遗传物质的影响(Leifels等人,2021年;Canh等人,2022年)。例如,我们的研究小组比较了使用两种不同插入染料(PMA和改进型PMA(PMAxx)以及是否添加增强剂(PMA Enhancer)的存活性PCR方法的效果,发现使用PMAxx和PMA Enhancer(PMAxx-Enhancer-PCR)的方法能更准确地区分传染性病毒和热或氯失活的病毒(Shirasaki等人,2020年)。因此,应用其他研究未使用的存活性PCR方法(如PMAxx-Enhancer-PCR)对于准确检测地表水(包括饮用水源)中具有完整衣壳的本土人类肠道病毒的存在情况非常重要。这为制定满足水传播疾病相关健康风险要求的饮用水处理标准提供了依据。
由于地表水中本土人类肠道病毒的浓度通常低于PCR的检测限,因此在定量之前需要先对地表水进行浓缩。在病毒浓缩过程中,地表水中天然存在的物质可能会与病毒一同被浓缩,并干扰PCR及插入染料预处理过程(Canh等人,2022年)。如果PCR受到抑制,原本应被扩增的病毒核酸将无法被检测到,从而导致对具有完整衣壳的本土人类肠道病毒数量的低估。相反,如果插入染料预处理受到抑制,原本应在处理后被抑制的病毒核酸(即衣壳受损的失活病毒中的核酸)会被扩增,从而导致对具有完整衣壳的本土人类肠道病毒数量的过高估计。因此,需要评估PCR和插入染料预处理的抑制效应,以准确定量地表水(包括饮用水源)中具有完整衣壳的本土人类肠道病毒的浓度。
人类肠道病毒从各种来源释放到地表水中,如污水处理厂和化粪池,随后会受到各种环境因素的影响。水温、颗粒物、微生物和酶活性以及阳光是影响地表水中人类肠道病毒传染性的关键环境因素(Nelson等人,2018年;Boehm等人,2019年)。一般来说,病毒的传染性取决于病毒核酸、衣壳蛋白或其他蛋白质(如参与宿主细胞受体识别和结合的蛋白质)的完整性(Wigginton等人,2012年)。然而,关于环境因素对病毒传染性的影响主要通过基于细胞培养的感染性检测方法进行研究(Boehm等人,2019年),这些方法无法区分病毒核酸、衣壳蛋白和其他蛋白质的损伤。因此,环境因素对病毒核酸、衣壳蛋白或其他蛋白质的损伤在病毒传染性丧失(即病毒失活机制)中的作用尚不清楚。如果病毒核酸的损伤是主要的失活机制,那么单独使用PCR是评估地表水(包括饮用水源)中本土人类肠道病毒传染性的有效方法。如果病毒衣壳蛋白的损伤是主要机制,则存活性PCR比单独使用PCR更为合适。因此,了解地表水中病毒传染性的丧失与病毒衣壳和核酸损伤之间的关系,对于确定单独使用PCR和存活性PCR检测饮用水源中传染性人类肠道病毒的存在情况至关重要。
本研究使用PMAxx-Enhancer-PCR检测了饮用水源中具有完整衣壳的本土人类肠道病毒的存在情况,并评估了PCR和PMAxx-Enhancer处理的抑制效应。研究对象包括腺病毒(AdV)、星状病毒(AstV)、人类诺如病毒(HuNoV)、肠道病毒(EVs;包括脊髓灰质炎病毒、柯萨奇病毒[CV]和埃可病毒)、 parechov病毒(PeV)、甲型肝炎病毒(HAV)、戊型肝炎病毒(HEV)和轮状病毒(RV),因为这些病毒被世界卫生组织列为与饮用水供应管理相关的病原体(WHO,2022年)。作为对照,还研究了辣椒轻斑病毒(PMMoV),因为它被提议作为水环境中粪便污染的指示病毒(Symonds等人,2018年),以及作为评估实际饮用水处理厂(DWTPs)病毒去除效率的替代指标(Shirasaki等人,2017年;Shirasaki等人,2018年)。此外,我们还通过病毒添加实验、单独使用PCR和PMAxx-Enhancer-PCR,研究了水温、颗粒物、酶活性和阳光对AdV、CV(属于EVs)、RV、鼠诺如病毒(MNV;作为人类杯状病毒的替代指标)和PMMoV在地表水中的病毒传染性、衣壳及核酸完整性的影响。

部分内容摘录

水样采集

从日本六个地区选择了十个饮用水处理厂(DWTPs)进行研究:A和B DWTPs位于北海道-东北地区;C和D DWTPs位于关东地区;E和F DWTPs位于中部地区;G和H DWTPs位于近畿地区;I DWTP位于中国-四国地区;J DWTP位于九州-冲绳地区。每个地区至少选择了一个DWTP,大多数DWTP位于一个或多个污水处理厂的下游。水源样本...

饮用水源中本土病毒的存在情况

首先,我们使用单独的PCR方法检测了饮用水源中本土人类肠道病毒和PMMoV的存在情况。在研究之前,我们确认了添加到水源样本中的病毒回收效率均超过10%(范围为29–127%),表明本研究采用的病毒浓缩和回收方法能够有效从不同水质的水源样本中检测到病毒(见S2.1节及图示)。

结论

  • (1)
    当仅使用PCR时,在测试的水源样本中,本土AdV、AstV、HuNoV GI型、HuNoV GII型、EVs和RV的阳性比例为10–60%(n = 30),浓度为10^1.7–4.1拷贝/升。相比之下,所有样本中均未检测到本土HuSaV、PeV、HAV和HEV。
  • (2)
    当使用PMAxx-Enhancer-PCR时,AdV、HuNoV GI型和RV在单独使用PCR呈阳性的样本中分别有16%(1/6)、14%(1/7)和0%(0/18)呈阳性。因此,这些存在于饮用水中的肠道病毒...

作者贡献声明

白川大樹:撰写——初稿、可视化、验证、调查、数据分析。白崎信隆:撰写——审稿与编辑、验证、项目管理、方法学研究、资金获取、概念构思。折木智史:调查、数据分析。松下卓:撰写——审稿与编辑、资金获取。松井良彦:撰写——审稿与编辑、资金获取。

利益冲突声明

作者声明没有已知的财务利益或个人关系可能影响本文的研究结果。

致谢

我们感谢日本国立环境研究所Wako分所的Miura博士教授我们使用实时RT-PCR检测RV病毒RNA和通过空斑形成实验检测传染性RV的方法。同时感谢各饮用水处理厂的工作人员提供水源样本。本研究得到了日本学术振兴会(资助编号22H01619、2022;23K22889、2024;22H00221、2022)和日本科学技术机构(资助编号JPMJFR215K)的支持。

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