矮惹鱼（Trichogaster lalius，Hamilton 1822）幼体的首次喂养：关于卵黄、轮虫、纤毛虫和螺旋藻的研究 ?hsan ?elik、 P?nar ?elik 和 Tolga G?ksan

《Fishes》：First Feeding of Dwarf Gourami (Trichogaster lalius, Hamilton 1822) Larvae: A Study on Egg Yolk, Rotifer, Infusoria and Spirulina ?hsan ?elik, P?nar ?elik and Tolga G?ksan

　　摘要：本研究评估了在Trichogaster lalius（小丽鱼）幼体 ??喂养期间提供不同饲料对幼体存活率的影响。在实验室条件下饲养的幼体在孵化后的第3至5天被分为四组不同的喂养处理：EY（煮熟的鸡蛋黄）、RO（活轮虫）、IN（草履虫）和SP（活螺旋藻），之后所有组在第5至10天都增加了活Artemia。共有4800只幼体被分配到这16个处理组中。第10天记录了幼体的数量和总长度（毫米），并计算了存活率。实验结束时，EY组的存活率为95.50 ± 4.05%，RO组为95.50 ± 2.53%，IN组为58.58 ± 8.88%，SP组为77.25 ± 10.23%。统计分析显示EY组和RO组之间的存活率没有显著差异（p > 0.05）。相比之下，IN组和SP组之间以及IN组与其他处理组之间存在显著差异（p < 0.05）。此外，在实验结束时，16组之间的总长度没有显著差异（p > 0.303）。总体而言，研究结果表明，在当前的实验条件下，T. lalius幼体在食用蛋黄和轮虫的喂养处理中的存活率高于食用草履虫和活螺旋藻的组。

1. 引言
鱼类幼体的早期喂养在水产养殖中至关重要，特别是在幼体阶段。随着消化系统的开始发育，消化酶也开始成熟。胃和肠道作为重要的消化器官，在第一次喂食时被激活并开始发育。因此，初始饲料的组成和颗粒大小决定了消化系统如何适应这一发育阶段。此外，初始喂养的营养质量直接影响幼体的存活率和生长表现[1]。不充分或不适当的初始喂养可能导致代谢压力、能量不足和生长迟缓。出于这些原因，在商业鱼类生产中，需要定制幼体的初始喂养方案以实现高经济效益。

在幼体喂养中，特别是对于消化系统发育较慢的物种，通常首选活饲料作为初始饮食[1]。在活饲料中，轮虫和Artemia是最常用的；然而，其他类群如桡足类和枝角类也被广泛使用[2,3,4]。因此，在这个阶段选择活饲料是一个关键考虑因素。使用活饲料有几个优点：它们可以刺激首次进食的幼体的进食反射，并通过支持幼体内酶和氨基酸谱的建立，促进更快的消化和吸收[5]。结果，控制在控制条件下的幼体通常表现出更好的生长和更高的存活率。相反，活饲料的生产成本可能很高。对于寻求最大化利润的商业运营来说，与活饲料生产相关的成本是一个关键因素。因此，研究成本低廉、可持续且能够提供均衡营养的替代饲料来源变得越来越重要，作为活饲料的潜在替代品[6,7]。目前，饲料成本的上升、与可持续性相关的要求以及饲料成分的变化进一步增加了对水产养殖中替代饲料资源的兴趣[7]。

文献中报道的关于鱼类幼体不同饲料喂养的实验研究表明，无论是单独提供还是与活饲料结合使用，替代饲料都可以显著影响幼体的存活率[6,7,8]。尽管有这些最新发现，活饲料的生产仍然很重要，因为替代饲料往往无法达到预期的表现水平[9]。开发鱼类幼体的微饲料不仅需要确定适当的营养组合，还需要考虑消化系统的发育过程、消化酶的直接或间接激活以及各种饲料成分的消化性[10]。评估不同类型活饲料效果的比较研究仍然有限。因此，本研究调查了不同类型活饲料及其组合对Trichogaster lalius（小丽鱼）幼体存活表现的影响。

T. lalius（小丽鱼）是一种原产于南亚的小型、外观引人注目的淡水鱼。它作为一种食用鱼和观赏鱼具有重要的经济价值，在水族贸易中被归类为“高价值”物种[11]。因此，为这一物种开发合适的繁殖和饲养技术对于满足市场需求至关重要。在密集的商业生产系统中，T. lalius幼体在初始喂养期间通常以活饲料喂养——最常用的是轮虫和Artemia。在本研究中，我们不仅评估了轮虫和Artemia，还评估了替代饲料来源，包括煮熟的鸡蛋黄、活Arthrospira (Spirulina) platensis和基于Paramecium的草履虫，这些饲料既单独使用也组合使用。该研究特别探讨了这些喂养处理与T. lalius幼体存活率之间的关系。

2. 材料与方法
2.1. 幼体饲养
从一家商业养殖场购买了20对一岁的成年小丽鱼。经过三周的适应期后，这些亲鱼被认为可以繁殖。在适应期间，雄性和雌性分别饲养在不同的水箱中。每个亲鱼水箱的尺寸为：长度100厘米、宽度50厘米、高度40厘米，水深35厘米。水温维持在26–27°C，pH值在7.0–7.5之间。一旦实验设置完成，10对亲鱼同时被转移到繁殖水箱中。繁殖水箱的尺寸为40厘米（长度）× 20厘米（宽度）× 35厘米（高度），水深30厘米。每个繁殖水箱同时放入一对雄性和雌性亲鱼。

最初，有四对亲鱼在同一天产卵。产卵一天后，雌性被从繁殖水箱中移出，而雄性继续照料鱼卵。孵化发生在产卵后的24–30小时内。孵化当天被指定为第1天。在孵化后的第1天（1 DAH），幼体悬浮在水面附近，几乎不动，活动很少，嘴巴也没有张开。第2天，幼体位于水面下方，活动时间比第1天有所增加；然而，它们的嘴巴仍然关闭。第3天，幼体开始短暂自由游动，并且嘴巴张开。所有在3 DAH内孵化的幼体在第3天被收集并从生产水箱中移除。从每个生产水箱中收集了1800–2600只幼体。总共从同一天产卵的四对亲鱼中获得了大约8800只幼体。在孵化后的第3天，所有8800只幼体被汇集到一个水箱中并彻底混合。随后使用从这个混合水箱中随机抽样的幼体形成实验组。实验开始时，测量了幼体的平均总长度（TL）。第3天的幼体TL为1531 ± 73.44 μm（1.53毫米）。

2.2. 实验设置
本研究评估了四种替代饲料对小丽鱼（Trichogaster lalius）幼体在过渡到Artemia之前的初始喂养效果。测试的饲料包括：(1) 煮熟的鸡蛋黄（EY），(2) 活轮虫（Brachionus plicatilis）（RO），(3) 基于Paramecium的草履虫（IN），(4) 活螺旋藻（Arthrospira platensis）（SP）。由于轮虫是该物种在标准条件下最常用的活饲料，因此轮虫组（RO）被指定为对照组。对于每种饲料类型，建立了四个实验组。如表1所示，第1组的幼体连续3天接受指定的饲料喂养，然后在第4天过渡到Artemia。第2组在第5天过渡到Artemia，第3组在第6天过渡，第4组逐渐过渡到Artemia。第5组从第5天开始同时接受Artemia和替代饲料的喂养，从第6天起完全以Artemia为唯一饲料。每个组包含三个重复实验。表1展示了实验组（16组）及每组应用的喂养方案。每个实验组进行了三次重复实验。实验在孵化后的第10天结束。实验设计如表1所示。在商业孵化场生产中，已知这些幼体可以在孵化后的第4天、第5天或第6天开始食用Artemia。因此，在本研究中，喂养方案旨在确定这些过渡日之间是否存在差异。

共建立了16个实验组，每个组包含三个重复实验。每个重复实验使用长度25厘米、宽度15厘米、高度12厘米的透明塑料水箱。每个水箱装有3升水（水深：8厘米；25 × 15 × 8厘米）。每个重复实验的水箱中放养了100只幼体。总共使用了4800只幼体。孵化后的前两天，幼体没有喂食。从第3天开始，实施表1中描述的喂养方案。

实验组的水温为27.0 ± 0.5°C。pH值范围在6.96到7.21之间，溶解氧（DO）范围在6.53到7.17 mg/L之间。

**鸡蛋黄（EY）**
将鸡蛋黄煮沸后溶解在500毫升饮用水中，然后过滤。这种溶液（500毫升）储存在6°C的冰箱中。对于接受鸡蛋黄的水箱，每个水箱每天投放100毫升作为单次喂养。

**轮虫（RO，=对照组）**
轮虫（Brachionus plicatilis）从一家商业孵化场获得，该孵化场也饲养海洋鱼类幼体。轮虫使用超纳米浓缩藻类培养，每毫升投放1000个个体，总制备体积为10升。送到实验室的轮虫在使用前未喂食。对于每个重复实验的水箱，每天每毫升提供6–7个轮虫作为单次喂养。

**草履虫（IN）**
通过将接种物放入五个无盖的透明塑料瓶中，使用来自主要培养水箱的水进行培养。在水中加入切碎的香蕉皮后，将瓶子置于直射阳光下。设置三天后，从Paramecium spp.培养水箱中取样加入培养基中。培养物在室温（22–24°C）下保持四周，无需通风。所有在这个培养基中繁殖的微小生物都被鉴定为草履虫。这些草履虫被用作小鲻鱼幼体的食物。从这个培养物中，每天向每个重复实验的水箱中加入0.5升。因为含有草履虫的水是以这种方式添加的，所以在喂食前每个接收草履虫的水箱会先排出0.5升水。对于其他组，不进行水交换。

**螺旋藻（SP）**
实验中使用了Arthrospira (Spirulina) platensis NIES-39菌株。该菌株来自国家环境研究研究所的培养 kolektion，最初从乍得湖分离出来。螺旋藻在Zarrouk培养基中培养。每组每天喂食100毫升活螺旋藻。每次喂养中螺旋藻的浓度为每毫升22,000个个体。与其他饲料一样，螺旋藻也作为单次每日喂养提供。

**Artemia**
Artemia（Artemia spp.）卵作为商业产品（INVE Aquaculture，比利时）购买。Artemia囊在27 ± 0.5°C和大约30‰的盐度下孵化。每个水箱每天提供6–8个Artemia个体作为单次喂养。所有组的实验在第10天结束。试验结束后，计数幼体，并测量其总长度和活体重。然后比较各组之间的存活率。

**饲料中的营养成分差异**
本研究还分析了用于饲养幼体的饲料的营养成分差异。一份100克的煮鸡蛋含有15.5千卡的能量、12.6克的蛋白质、10-10.5克的脂质、0.56-1.1克的碳水化合物，以及50-52%的干物质[12]。轮虫的蛋白质含量为47-55%，脂质含量为14-2%，碳水化合物含量为5-15%，干物质含量为8-10%[13]。尽管不同菌株的数值有所差异，但Arthrospira platensis通常含有50-70%的蛋白质、3-10%的脂质和10-20%的碳水化合物（按干重计）[14]。其能量含量在每100克290到390千卡之间。此外，由于细胞壁中富含易于消化的多糖（占84%），而非特定于该物种的纤维素，所有营养成分——尤其是蛋白质——都极易被吸收[15]。Artemia的营养组成包括46-52%的蛋白质、18-20%的脂质、5-15%的碳水化合物以及6-11%的干物质（INVE Aquaculture Inc., Dendermonde, Belgium提供）。

2.3 统计分析
首先，为了确定接受相同饲料类型（例如EY1、EY2、EY3、EY4）的组间是否存在统计学上的显著差异，进行了Kruskal–Wallis分析。该测试针对每个饲料组分别进行。如果Kruskal–Wallis测试显示有显著差异，则使用Dunn测试进行后续的成对比较。为了识别在所有可能比较中哪些特定组之间存在显著差异，应用了Tukey’s HSD测试。

### 整体平均值
### 整体标准差（示例）：4.3

3. 结果
从第6天开始，所有实验都仅使用Artemia喂食幼虫。第10天，实验终止，并对幼虫数量进行计数以确定存活率。表2展示了基于卵黄喂养的早期喂养组的实验结束时存活率。根据这些数据，EY1组（仅在第三天提供卵黄，之后转喂Artemia）与EY2、EY3和EY4组（在第三至第五天提供卵黄后转喂Artemia）之间的幼虫存活率没有显著差异（p > 0.05）。此外，这些卵黄处理组内部的比较也未发现显著差异。Kruskal–Wallis测试的p值约为0.76，表明四个组之间没有统计学上的显著差异（p > 0.05）。

### 各组的存活率（平均值 ± 标准差）
- EY1：94.33% ± 1.63%
- EY2：91.00% ± 4.58%
- EY3：94.66% ± 4.16%
- EY4：96.33% ± 2.36%
- EY组（含卵黄）的 combined 平均存活率为95.50% ± 4.05%

### 轮虫组（RO1–RO4）
使用了Kruskal–Wallis测试来评估这些组之间的差异，结果显示p值在0.75–0.80之间。由于p值不在显著性范围内，因此轮虫组之间没有统计学上的显著差异。存活率范围为94.33% ± 2.52%至96.33% ± 1.15%，RO1–RO4组的 combined 平均存活率为95.50% ± 2.53%。

### 黏菌饲料组（IN1–IN4）
同样使用Kruskal–Wallis测试进行了评估，结果显示p值不在显著性范围内，表明四个黏菌组之间没有统计学上的显著差异。存活率范围为55.00% ± 9.00%至61.00% ± 5.00%，IN1–IN4组的 combined 平均存活率为58.58% ± 8.88%。

### 螺旋藻饲料组（SP组）
使用Kruskal–Wallis测试进行了比较，结果显示p值不在显著性范围内，表明螺旋藻组之间没有显著差异。这些组的存活率范围为72.66% ± 12.02%至84.00% ± 2.00%，combined 平均存活率为77.25% ± 10.23%。

### 总体而言
在这项研究中，矮罗汉鱼幼虫在四种不同的饲料处理下进行饲养，每种饲料都采用了四种喂养方案（每个重复实验箱起始时放置100条幼虫）。第10天对幼虫进行了计数，存活率结果见表3。在四种主要饲料类型中，卵黄（EY）和轮虫（RO）组的存活率最高，combined 平均存活率为95.50%。螺旋藻组的存活率次之，范围为72%至84%，combined 平均存活率为77.25 ± 10.23%。黏菌组的存活率最低，为55%至61%（表3）。

表3显示了第10天各实验组的最终幼虫大小（平均总长度，单位：毫米 ± 标准差 [SD]）。根据四种主要饲料组的存活数据，卵黄（EY）组和轮虫（RO）组之间的存活率没有显著差异。然而，在其他处理组之间发现了差异，特别是EY组和RO组之外的组之间存在显著差异。

孵化后第3天，幼虫的平均总长度为1.53 ± 0.73毫米。这些幼虫在所有组中均匀分布。

实验结束时（第10天），分别测量了每组的平均总长度。EY1组的平均长度最低，为3.39 ± 0.26毫米，而RO1组的平均长度最高，为4.45 ± 0.41毫米。为了检测第10天各组之间的平均总长度是否存在差异，进行了Kruskal–Wallis测试。结果表明EY、RO、IN和SP组之间的平均总长度没有统计学上的显著差异（p > 0.05）。

4. 讨论
在这项研究中，测试了四种不同的初始喂养饲料类型（卵黄、轮虫、黏菌和螺旋藻）与Artemia相结合的四种组合对矮罗汉鱼幼虫的影响。在每种饲料类型内，各亚组（例如EY1、EY2、EY3、EY4）之间的幼虫存活率没有显著差异（p > 0.05）。轮虫组（RO1–RO4）、黏菌组（IN1–IN4）和螺旋藻组（SP1–SP4）也表现出类似的模式。目前，专业生产者在商业化养殖中主要优选使用轮虫作为幼虫饲料，这种方法取得了成功的结果。因此，在本研究中将轮虫组（RO）作为对照组。通过比较RO组（已知能带来高存活率）与其他实验组的结果，可以了解替代饲料的相对效果。RO组的存活率约为95.50%，这是一个非常高的且可接受的比率。当将其他组与对照组比较时，EY组的存活率与对照组相当（95.50%），而IN组和SP组的存活率低于RO组。根据这些结果，只有EY组的存活率与RO组相当。

然而，四个主要饲料组的 combined 平均存活率存在差异。EY组和RO组的 combined 平均存活率较高（约95.50%），而螺旋藻组的平均存活率约为77.25%，黏菌组的平均存活率约为58.58%。总体而言，EY组和RO组的存活结果对水产养殖非常有利，而螺旋藻组和黏菌组的存活率相对较低。黏菌组存活率较低的原因是每日提供的食物量不足。因此，预计增加初始喂养中黏菌的量可以提高存活率。未来的研究应解决这一限制并监测相关结果。潜在的后续实验包括：(1) 增加每日黏菌的供应量以确定最佳剂量；(2) 标准化饲料分配和更新率；(3) 更详细地时间序列评估高黏菌和螺旋藻组合对存活率的影响；(4) 研究存活率与生长（长度/重量）之间的相关性，以便更好地理解它们的表现。

这些结果表明，初始喂养阶段对矮罗汉鱼的养殖至关重要：EY和RO支持成功的开始，而替代饲料（SP、IN）可能带来较低的性能。因此，未来的工作应集中在寻找高效的起始饲料并开发优化存活率的方案上。

幼虫在10天大时被终止，生存率通过在第10天测量总长度来评估。根据这些测量结果，在实验结束时各组之间的平均总长度没有统计学上的显著差异（p = 0.303）。因此，在前10天内，起始饲料EY、RO、IN和SP对生长没有表现出不同的影响。

活螺旋藻不常用于幼虫喂养。在这项研究中，活螺旋藻被作为矮罗汉鱼幼虫的初始喂养成分进行了测试。螺旋藻是一种营养丰富的微藻，尽管许多鱼类幼虫不能直接摄入整个微藻生物，但我们观察到矮罗汉鱼幼虫从开口之日起就能摄取活螺旋藻（图1）。这一发现很有价值，表明活螺旋藻可能适用于这种鱼类的起始饲料。

图1. 孵化后4天的Trichogaster lalius幼虫喂食螺旋藻。肠道中的绿色表明螺旋藻被积极摄取。当螺旋藻与Artemia一起使用时，矮罗汉鱼幼虫的存活率在72.66%至84%之间。由于这在该物种中首次测试时支持了存活能力，表明其具有未来研究的潜力，并可能激发更广泛的应用。总体而言，这些发现为文献增添了关于矮罗汉鱼幼虫营养的新见解。

在鱼类养殖中——尤其是在幼虫阶段——活饲料和喂养方案对孵化场的成功至关重要[2,16]。用于幼虫养殖的活饲料通常以轮虫和Artemia为主，但越来越多地探索使用其他生物（如桡足类、枝角类和其他物种）作为补充或替代选项[2,3,4]。然而，活饲料如轮虫和Artemia成本较高，需要额外的人员、劳动力和设施空间，使其生产和使用更加复杂和昂贵[16]。因此，鱼类养殖的努力旨在开发替代的活饲料类型并扩大新饲料的使用[16]。

在这项研究中，应用了上述概念来开发实用的喂养方案。由于矮罗汉鱼幼虫的嘴巴太小，无法在孵化后立即摄取Artemia，因此测试了四种不同的起始饲料，在转换到Artemia喂养之前使用。第一种选择是煮鸡蛋黄。虽然这不是活饲料，但它是一种传统的早期幼虫喂养方法，用于鲤鱼（Cyprinus carpio）和非洲鲶鱼（Clarias gariepinus）[17]。一项研究考察了用冻干和不同形式的鸡蛋黄（冻干鸡蛋黄、鹌鹑蛋黄、珍珠鸡蛋黄和火鸡蛋黄）喂养的Clarias gariepinus幼虫的生长表现、存活率和经济效益[17]。在该试验中，Artemia（T0）作为对照组，其他组分别喂食鸡蛋黄（T1）、鹌鹑蛋黄（T2）、珍珠鸡蛋黄（T3）和火鸡蛋黄（T4）。试验持续12天，每天喂食五次。试验结束时，Artemia（T0）、鹌鹑蛋黄（T2）和火鸡蛋黄（T4）组之间的幼虫存活率没有显著差异（p > 0.05[17]）。

在我们的研究中，卵黄（EY）组的存活率非常高（约95.50%）。数据还表明，添加Artemia可能促进更快的生长，但其较高的成本可能会降低整体经济效益[17]。在大规模幼虫生产中，成本计算尤为重要。

在水产养殖中，广泛使用禽蛋及其成分来制作鱼类幼虫饲料，特别是对于那些幼虫太小而无法有效摄取常见活饲料的物种。鸡蛋黄粉已被用作许多鱼类物种的幼虫饲料成分，包括Clarias gariepinus和Poecilia reticulata（孔雀鱼）[18,19]。鸡蛋黄被认为具有营养价值，并与高幼虫存活率相关[20]。鸡蛋黄含有大约33%的总脂质和16%的粗蛋白，以及维生素和矿物质[20]。它还富含脂溶性维生素（A、D、E）和欧米伽-3脂肪酸[21]。此外，蛋黄可以支持幼鱼的肌肉生长并有助于免疫功能[22]。尽管营养价值可能因鸡蛋来源和喂养方法的不同而有所差异[20]，但先前的研究一致表明，蛋黄对鱼苗来说是有效的[17,18,19,20]。在这项研究中，煮熟的鸡蛋黄（EY组）作为矮丑鲈鱼幼鱼的初始饲料表现出高效的性能，提供了一种健康且低成本的替代方案。由于其普遍可用性，以及不需要额外的劳动力、专业人员或生产空间来制备，这使得它成为矮丑鲈鱼和其他类似鱼类的实用选择。另一个优点是喂食蛋黄的组（EY1–EY4）的存活率很高，存活率保持在95%以上。

一个关键的实用考虑因素是水质。由于蛋黄含有有机物质，可能会迅速恶化水质。因此，使用蛋黄时必须适当过滤饲料并避免过量。应密切监测鱼缸，如果出现水质下降的迹象，应实施受控的水交换方案。在适当的数量和时间内提供蛋黄，可以维持水质在健康范围内。

本研究评估的另一种饲料类型是轮虫（Brachionus plicatilis）。轮虫被广泛用作第一次喂养的活饲料，适用于口腔开口太小而无法摄取卤虫的幼鱼[23]。它们在海洋鱼类幼鱼的大规模生产系统中特别常见，喂食轮虫的幼鱼通常存活率很高[24,25,26]。与此一致的是，喂食轮虫的组（RO1–RO4）也表现出较高的幼鱼存活率（>95%）。轮虫本身没有主要的生物劣势；然而，轮虫的培养可能成本较高且劳动密集。轮虫的生产通常需要活的微藻培养物（如Nannochloropsis sp.、Dunaliella sp.、Tetraselmis sp.）或浓缩藻类作为饲料[27]。由于这一过程也需要人力、人员和生产空间，轮虫通常是一种相对昂贵的活饲料。尽管如此，如本研究所示，轮虫仍能积极影响幼鱼的存活率。

草履虫属以及其他单细胞生物也可以用作鱼苗的初始饲料，并且通常在后期被卤虫取代[2,5]。许多生产者传统上采用这种策略。例如，一项研究测试了不同类型的活饲料及其组合对梭鲈鱼幼鱼（Sander lucioperca）性能的影响，评估了存活率、总长度、体宽和畸形率[28]。在该实验中，从第0天（开始外部喂养）到第10天，幼鱼被喂食包括海洋轮虫Brachionus plicatilis、淡水轮虫Brachionus calyciflorus和纤毛虫Paramecium bursaria的组合。报告的结果表明，喂食B. plicatilis、B. calyciflorus和P. bursaria的存活率约为80%，并促进了更均匀的生长，包括总长度增加了50%和体宽增加了20%。在我们的研究中，矮丑鲈鱼幼鱼的初始喂养使用了类似微藻的微生物群落——滤虫，主要由Paramecium sp.组成。滤虫喂养是鱼苗早期喂养的广泛使用的方法[29]。滤虫由多种单细胞生物组成（包括纤毛虫、原生动物、变形虫、轮虫、眼虫等）。它们的小体积（25–300 μm）和柔软的身体，加上高营养价值，使它们非常适合作为鱼苗的早期饲料[30,31]。

滤虫自然存在于养鱼的水体中；然而，在大多数水产养殖环境中，它们的自然丰度不足以满足幼鱼的喂养需求。因此，通常需要单独培养滤虫。它们可以使用香蕉皮、生菜、卷心菜和稻壳等多种基质进行培养[30,32]。在本研究应用的滤虫培养中，使用了香蕉皮作为基质。在以滤虫作为初次喂养的组（IN1、IN2、IN3、IN4）中，矮丑鲈鱼幼鱼在第10天的存活率在55%到61%之间，低于其他喂养组的存活率。在四个滤虫喂养组中，存活率最低，这可能与每天提供的滤虫量相对较少有关，可能未能充分满足幼鱼的营养需求。

一项关于仅喂食滤虫的新孵化斑马鱼（Xiphophorus maculatus）鱼苗的研究表明，与没有活饲料的幼鱼相比，喂食滤虫的幼鱼存活率和生长显著更好[33]。这项工作强调了滤虫培养作为提高斑马鱼苗生产的经济高效和可持续活饲料的作用。我们的结果与矮丑鲈鱼幼鱼的结论一致，重要的注意事项是每日提供的数量必须足够；滤虫供应不足会导致存活率降低。

螺旋藻是一种蓝绿色丝状藻类，含有必需脂肪酸（如棕榈酸、亚油酸和亚麻酸），以及高蛋白含量（60–70%）、维生素和矿物质。因此，它被广泛用作鱼苗的饲料资源[34,35,36,37]。此外，螺旋藻因其含有具有抗氧化活性的生物活性化合物而越来越受到关注[38,39,40]。在养鱼业中，使用抗生素控制疾病是一个主要限制。因此，基于益生菌和活生物体的策略作为潜在替代方案受到了更多关注。例如，一项研究使用螺旋藻（Arthrospira platensis）作为尼罗罗非鱼（Oreochromis niloticus）的生长促进剂和免疫增强剂[22]。在该实验中，鱼类被喂食不同比例的螺旋藻强化饲料12周后，然后暴露于致病菌Aeromonas hydrophila。研究报道，喂食螺旋藻的鱼生理参数有所改善，且随着饲料中螺旋藻含量的增加，A. hydrophila感染的死亡率降低[22]。这些发现突显了螺旋藻补充剂作为罗非鱼养殖疾病预防的有希望的抗生素替代品[22]。除了促进生长外，螺旋藻还有助于支持免疫系统，加强了其作为营养饲料成分的作用。

由于其重要性，本研究将活螺旋藻作为矮丑鲈鱼幼鱼的初始饲料进行了测试。众所周知，许多鱼类不能直接摄取活微藻。然而，在这项研究中，观察到矮丑鲈鱼幼鱼从刚开始喂养的第一天就开始摄取活螺旋藻（Arthrospira platensis）（图1）。孵化的第三天，幼鱼开口并开始喂食螺旋藻，SP1、SP2、SP3和SP4组的存活率在72%到84%之间。实际上，这些存活率对于养鱼来说是可接受的。相比之下，喂食蛋黄（EY1、EY2、EY3和EY4）和轮虫（RO1、RO2、RO3和RO4）的组存活率超过了95%。螺旋藻喂养组的存活率较低，并非由于螺旋藻本身的营养价值较低，而是因为幼鱼摄入的干物质相对较少。培养物的干生物量密度约为0.4 g/L，每天100 mL的饲料提供了0.04 g的干螺旋藻生物量。考虑到一个蛋黄的重量约为25 g，含水量约为50%[41]，EY组每天从蛋黄中摄入的干物质约为2.5 g。然而，如果螺旋藻的免疫效益成立，活螺旋藻可以作为矮丑鲈鱼幼鱼的初始饲料。另一方面，螺旋藻的生产成本较高。

在列出本试验中使用的饲料的采购成本时，螺旋藻可能是仅次于轮虫的第二昂贵的饲料。从这个角度来看，滤虫和鸡蛋黄更便宜且更容易获得。因此，本研究中测试的所有四种饲料类型都可以用作矮丑鲈鱼幼鱼的初始饲料。然而，如果优先考虑成本和劳动力，我们建议首先使用鸡蛋黄（EY组）。这是因为根据幼鱼的存活率平均值，喂食鸡蛋黄（EY组）和轮虫（RO组）的存活率最高。此外，蛋黄的成本远低于轮虫的生产成本，使得EY组成为这两个组中更经济的选择。

作者应讨论结果及其如何根据以往的研究和工作假设进行解释。应该尽可能广泛地讨论这些发现及其含义，并指出未来的研究方向。尽管如此，幼鱼存活率的差异不仅可能与喂养协议有关，还可能与营养成分、消化率、颗粒大小和自然进食行为有关。例如，EY组和RO组的高且稳定的存活率（约95.50%）也可能表明这些饲料更好地满足了幼鱼的早期营养和能量需求[2,16]。喂食轮虫的幼鱼存活率高的原因可能还与轮虫的小尺寸、幼鱼易于摄取以及其高营养价值有关[23]。另一方面，轮虫是一种消化率高的活饲料。如上所述，滤虫组存活率低的一个可能原因是幼鱼每天摄入的滤虫量较少。因此，其他存活率较低组（如IN组）的存活率受影响的另一个因素可能是幼鱼摄入的相应饲料量。在这项研究中，确定幼鱼是否能够摄取螺旋藻非常重要。然而，SP组相对较低的存活率（约77.25%）可能与幼鱼的净干物质摄入量及其直接营养价值有关。螺旋藻的含水量很高（80–90%[14,15]）。因此，由于幼鱼摄入的螺旋藻中有80–90%是水，这种每日饲料摄入量可能不足以满足幼鱼的营养需求。由于这些结果，幼鱼存活率的差异可能不仅取决于饲料类型，还取决于其他因素，如营养成分、消化率和饲料摄入量。如果未来的研究能够考虑这些因素，可以更清楚地揭示这些机制的影响。

在这项研究中，评估了不同初始饲料（煮熟的蛋黄、活轮虫、滤虫和活螺旋藻）对矮丑鲈鱼（Trichogaster lalius）幼鱼存活性能的影响，既包括在过渡到卤虫之前的情况，也包括之后的情况。实验结束时，喂食蛋黄和轮虫的组存活率最高。因此，在T. lalius幼鱼及其类似物种的初始喂养中使用这两种饲料可能会产生有效的结果。另一方面，螺旋藻也显示出作为合适初始饲料的潜力。因此，特别是在观赏鱼如丑鲈鱼的养殖中，像蛋黄这样的可行替代品在考虑成本和操作工作量时可以提供与轮虫相当的性能。此外，基于微藻的活饲料如螺旋藻可以在未来研究中使用更详细的方案进行进一步评估。