开发了一种基于 sense-antisense 结构和双最小沟槽结合特性的探针 PCR 方法,用于血浆样本中大肠癌的早期检测
《Chinese Medical Journal》:Development of a sense-antisense and dual-minor groove binder probe PCR assay in plasma for early detection of colorectal cancer
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时间:2026年05月10日
来源:Chinese Medical Journal 7.3
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致编辑:自从Cologuard[1]问世以来,该技术能够检测粪便DNA中的血红蛋白、KRAS突变以及两个基因的甲基化,基于粪便DNA甲基化的结直肠癌(CRC)筛查方法受到了越来越多的关注。与基于粪便的检测方法相比,基于无细胞DNA(cfDNA)甲基化的检测方法可能更容易被接受,并
致编辑:自从Cologuard[1]问世以来,该技术能够检测粪便DNA中的血红蛋白、KRAS突变以及两个基因的甲基化,基于粪便DNA甲基化的结直肠癌(CRC)筛查方法受到了越来越多的关注。与基于粪便的检测方法相比,基于无细胞DNA(cfDNA)甲基化的检测方法可能更容易被接受,并且更适合临床应用,尽管目前这些方法的普及程度仍然较低。Septin9代表了一种有前景的初步方法;然而,由于早期敏感性不足的局限,美国胃肠病学会(ACG)的指南目前已不再推荐使用该方法[2]。血液甲基化检测的发展受到几个重大挑战的阻碍,包括cfDNA浓度低、组织可追溯性问题以及白细胞干扰等。解决这些问题的一个潜在方法是寻找更有前景的标志物,这些标志物很可能是全新的目标,因为癌症信号在这些样本类型中的存在机制不同。此外,开发能够检测微量cfDNA的敏感检测技术对于这些检测方法的成功至关重要。在这项研究中,我们通过17个公共的450K/850K微阵列数据集[补充表1,https://links.lww.com/CM9/C390]分三个步骤鉴定了早期CRC的甲基化标志物。这17个数据集包括组织样本、健康全血细胞(WBCs)和血浆cfDNA。第一步是从14个基因表达组(GEO)数据集中识别差异甲基化的CpG(DMC)位点,这些数据集包含CRC、腺瘤和正常邻近组织(NAT)样本。第二步通过应用来自癌症基因组图谱(TCGA)数据库的31种不同类型的癌症样本,进一步筛选第一步中发现的DMC。第三步使用这三个数据集来验证所识别的候选标志物[图1A]。在第一步中,共有2238个DMC在癌症与正常组织以及腺瘤与正常组织的比较中被识别出来[图1A和补充图1A,https://links.lww.com/CM9/C390]。在这些基因中,有75个在TCGA的30例非CRC病例中被发现是低甲基化的[图1A和补充图1B,https://links.lww.com/CM9/C390]。随后,通过应用LASSO回归将数量减少到8个[图1A和补充图1C,https://links.lww.com/CM9/C390]。其中两个基因,cg14015706和cg08247376,分别位于NTMT1的第一个外显子和MAP3K14-AS1转录起始位点上游200个碱基对处,被确定为适合设计引物/探针的候选基因。此外,这两个探针在所有三个公共验证数据集中都显示出高甲基化[补充图1D–F,https://links.lww.com/CM9/C390],因此被认定为潜在的候选标志物。
图1:本研究的工作流程和发现。(A) 通过应用指定的筛选标准从17个公共数据库中识别潜在DMC的过程。左列显示了每个筛选步骤中使用的数据集,中间列展示了每个筛选步骤中应用的筛选条件,右列显示了被筛选出的候选DMC的数量。(B) SADMP技术的示意图。对于NTMT1基因,根据正义和反义BS DNA序列以及CBS DNA设计了两个引物对及其相应的MGB探针。对于MAP3K14-AS1基因,根据反义BS DNA和CBS DNA设计了一对引物和两个MGB探针。(C) 使用血浆训练集中的CRC + AA组与对照组,展示了NTMT1和MAP3K14-AS1的ROC曲线。(D) 在训练集、验证集和整个数据集中单独检测以及联合检测NTMT1和MAP3K14-AS1时的敏感性和特异性,以及敏感性和特异性的95%置信区间。(E) 分别单独检测和联合检测时,NTMT1和MAP3K14-AS1在非-AA和AA病例中的甲基化敏感性。(F) 在不同CRC阶段单独检测和联合检测时,NTMT1和MAP3K14-AS1的甲基化敏感性。(G) 单独检测和联合检测时,NTMT1和MAP3K14-AS1在健康样本、NDD样本、ID样本和息肉样本中的甲基化特异性。(E–G)中的误差条代表95%置信区间。AA:晚期腺瘤;BS:亚硫酸盐转化;CBS:正义/反义BS的互补序列;CRC:结直肠癌;DMC:差异甲基化CpG;FDR:假发现率;ID:肠道疾病;LASSO:最小绝对收缩和选择算子;MGB:小沟结合蛋白;NATs:正常邻近组织;NDD:非消化系统疾病;non-AA:非晚期腺瘤;ROC:接收者操作特征;SADMP:正义-反义和双MGB探针。
为了确定这两个候选标志物的临床相关性,我们在郑州大学第一附属医院获得的60个组织样本和709个血浆样本中分析了它们的甲基化状态。本研究遵循了机构审查委员会(IRB)制定的伦理标准,并得到了郑州大学第一附属医院IRB的批准(编号2022-KY-0631-002)。每位参与者都签署了知情同意书。本研究是“血浆中泛癌症DNA甲基化检测的临床研究”(临床试验,编号NCT05685524)的一个子项目。在亚硫酸盐处理后,对NTMT1和MAP3K14-AS1的目标区域进行了Sanger测序,以确认30个CRC组织样本和30个NAT样本中的甲基化状态。所用引物的序列见补充表2,https://links.lww.com/CM9/C390。研究发现,与NAT样本相比,CRC样本中的CpG位点甲基化频率更高[补充图2,https://links.lww.com/CM9/C390]。为了提高候选标志物识别血浆中低丰度cfDNA甲基化信号的能力,我们尝试实施了双链和双小沟结合蛋白(MGB)探针的聚合酶链反应(PCR)方法,我们将其称为正义-反义和双MGB探针(SADMP)技术。对于NTMT1基因,使用了两组引物和探针来同时扩增扩增子区域的正义链和反义链(经过亚硫酸盐转化后)。对于MAP3K14-AS1,使用了一对引物和两个探针来扩增扩增子区域的反义链[图1B]。标准曲线显示,这两种基因的扩增效率分别为98%和110%[补充图3A,D,https://links.lww.com/CM9/C390],这被认为是令人满意的(在95–110%的范围内)。正如理论预期,SADMP技术使得这两种基因的循环阈值(Ct)值比单链扩增或使用单个探针时提高了一个循环[补充图3B,E,https://links.lww.com/CM9/C390]。此外,SADMP检测对NTMT1和MAP3K14-AS1具有高度敏感性。当没有甲基化DNA存在且存在大量未甲基化DNA(107拷贝/μL)时,未观察到扩增曲线。此外,它们可以在10拷贝/μL和5拷贝/μL的浓度下稳定检测到甲基化DNA[补充图3C,F,https://links.lww.com/CM9/C390]。随后,通过SADMP方法在709名参与者的2毫升血浆中验证了这两个生物标志物。两毫升的血浆cfDNA经过亚硫酸盐转化后,用于甲基化特异性PCR(MSP)。MSP引物和探针的位置和序列见补充表3,https://links.lww.com/CM9/C390,以供参考。PCR溶液的组成见补充表4,https://links.lww.com/CM9/C390。血浆样本来自CRC患者、晚期腺瘤(AA)患者、非晚期腺瘤(non-AA)患者、息肉患者、肠道疾病(ID)患者、非消化系统疾病(NDD)患者和健康受试者。709名受试者的 demographic 和临床病理数据见补充表5,https://links.lww.com/CM9/C390。整个数据集被随机分为训练集和验证集,比例为2:1。最初,使用接收者操作特征(ROC)曲线分析来确定这两个基因的Ct值临界值,将CRC和AA样本视为阳性样本,其余样本视为阴性样本[图1C]。NTMT1和MAP3K14-AS1基因的临界值分别确定为48.2和48.4。当这两个基因联合检测时,如果其中一个基因或两个基因均为阳性,则认为样本具有甲基化。根据上述解读标准,训练集、验证集和整个数据集中的双靶点甲基化检测的敏感性分别为86.4%、81.8%和84.8%,明显高于单一靶点检测的敏感性[图1D]。特异性分别为91.0%(NTMT1)、92.5%(MAP3K14-AS1)和91.5%(双靶点)。在不同年龄、性别、位置和病理类型的CRC患者中,总体敏感性没有显著差异[补充表6,https://links.lww.com/CM9/C390]。双靶点检测在检测早期肿瘤方面表现出有效性,对于AA、I期CRC和II期CRC的敏感性分别为32.0%、75.0%和81.2%[图1E,F]。对120个CRC样本进行了NTMT1/MAP3K14-AS1和Septin9甲基化检测的头部对比研究。结果表明,NTMT1/MAP3K14-AS1的敏感性显著高于Septin9(85.8% vs 61.7%)[补充表6,https://links.lww.com/CM9/C390]。双靶点检测在健康样本中显示出最高的特异性(95.9%),在不同亚组(包括健康个体、NDD样本、ID样本和息肉样本)中表现出一致的性能[图1G]。这表明该检测方法能够抵抗各种良性条件的干扰。先前的研究者已经报道过C9orf50[3]和MAP3K14-AS1[4]在CRC诊断和筛查中的应用。在本研究中,我们发现当它们联合检测时,敏感性显著提高,超过了传统的Septin9检测方法。预计血浆NTMT1/MAP3K14-AS1双靶点甲基化检测将成为一种新的非侵入性CRC筛查工具。
**资助**:本研究得到了河南省科技项目(编号232102310028)的支持。
**利益冲突**:无。
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