焦亡是一种新兴的程序性细胞死亡模式。[1], [2], [3] 一类被称为gasdermin的蛋白质因具有潜在的膜穿孔活性而在细胞死亡中起着重要作用。[4] 在经典的焦亡途径中,激活的caspase 1切割gasdermin D(GSDMD)蛋白,产生gasdermin-N(N-GSDMD)结构域。生成的N-GSDMD结构域与膜磷脂结合,导致细胞膜穿孔,从而引起细胞肿胀并形成大的气泡。这一过程进一步导致膜破裂,并释放大量细胞内容物(如乳酸脱氢酶(LDH)和炎症因子(如白细胞介素-1β(IL-1β))[5], [6], [7]。迄今为止报道的多种诱导焦亡的策略中,离子调节显示出巨大潜力。[8] 许多离子,如K+、Al3+、Zn2+和Ca2+,已被证明可以触发焦亡,释放出一系列细胞内容物,激活机体的免疫反应。[9], [10], [11], [12], [13], [14], [15] 鉴于此,全面探索离子调节的治疗潜力至关重要。
Ca2+是参与细胞多种生理过程的第二信使。[16] 线粒体作为细胞钙信号传导的关键解码器,通过低亲和力的线粒体钙转运蛋白(MCU)复合体,特异性响应由内质网或质膜通道打开产生的局部高浓度钙微域。这种独特的敏感性使线粒体能够快速吸收钙离子,并及时调节核心功能,包括能量代谢和细胞死亡信号通路。[17], [18], [19] Ca2+浓度的轻微扰动就可能严重影响线粒体的正常功能。通常,线粒体内的游离Ca2+和结合Ca2+之间存在动态平衡。当细胞内Ca2+浓度升高时,线粒体内的Ca2+动态平衡被打破。严重的Ca2+过载会破坏线粒体,进一步激活caspase 1,从而触发肿瘤细胞发生焦亡,释放一系列细胞内容物,进而引发一系列免疫反应。[20], [21], [22]
目前,实现Ca2+过载的策略主要集中在引入外源性Ca2+来源,以增加肿瘤细胞内的钙水平,从而达到治疗目的。[23] 然而,传统的钙引入机制,如CaO2和CaCO3,在肿瘤细胞外的酸性微环境中会有一定程度的降解。[24], [25], [26], [27] 即使少量外源性钙进入肿瘤细胞,由于内质网(ER)的缓冲作用以及许多跨膜Ca2+转运蛋白/泵的存在(如瞬态受体电位(TRP)通道[28]和电压门控Ca2+通道[VGCC][29],也很难打破肿瘤细胞的细胞内Ca2+稳态。[30] 因此,调节肿瘤自身携带的内源性Ca2+来源可能是一个更好的选择。ER是一种在细胞中储存Ca2+并维持细胞内Ca2+稳态的细胞器。[31], [32] Ryanodine受体通道(RYR)位于ER膜表面,在某些刺激下可以打开,释放ER中的Ca2+,使肿瘤细胞内的Ca2+浓度上升。[33] 然而,由于肿瘤细胞内环境的稳态限制,ER中Ca2+泄漏引起的Ca2+扰动效果有限。相关研究表明,肿瘤细胞外的Ca2+浓度大约是细胞内的1000倍。[34], [35], [36] 将细胞外的Ca2+引入细胞是一种实现线粒体Ca2+过载的好方法。细胞表面的Ca2+转运蛋白TRPV1在单线态氧(1O2)的刺激下可以打开,允许Ca2+从外部流入细胞。[37], [38], [39] 因此,巧妙结合细胞外Ca2+流入和ER Ca2+泄漏是一种有效诱导线粒体内源性Ca2+过载的有前景的策略。
在这项研究中,我们提出通过上转换发光(UCL)介导的线粒体内源性Ca2+过载来诱导焦亡并激活免疫功能,从而抑制肿瘤和肺转移。选择中空NaBiF4: Yb, Er上转换纳米颗粒(UCNPs)作为光转换平台,因为它们具有独特的光学性质和高比表面积。[40] 然后将放线菌素D(TM)和Merocyanin 540(MC540)负载到UCNPs上,并用1,2-二硬脂酰-sn-甘油-3-磷乙醇胺(DSPE-mPEG)进行修饰,使其具有生物相容性(UMTP)。UMTP的抗肿瘤机制如图1所示。一方面,UMTP在近红外(NIR)照射下产生的1O2刺激细胞膜上的TRPV1通道打开,使Ca2+流入肿瘤细胞外部;另一方面,TM打开ER表面的RYR通道,使ER中的Ca2+泄漏到细胞质中。在细胞外Ca2+流入和ER Ca2+泄漏的双重作用下,细胞质中Ca2+浓度的增加进一步引发线粒体中的Ca2+过载,最终通过caspase 1/gasdermin D(GSDMD)依赖的途径触发焦亡。在焦亡过程中,细胞形成大的液泡并释放大量炎症分子和细胞内容物,从而引发免疫反应,有效抑制肿瘤增殖和肺转移。