栗子(Castanea mollissima Bl.)是壳斗科的重要成员,具有悠久的栽培历史,主要产于中国(Li et al., 2022)。过去十年间,全球栗子产量稳步增长,主要是由于消费者对其营养价值的认识不断提高(Massantini et al., 2021)。栗子富含淀粉(干物质基计39.0–71.0%),同时也是蛋白质(6.9–9.7%)和抗氧化剂(Carlsen et al., 2010; Pereira-Lorenzo et al., 2006; Yang et al., 2018; Zhu et al., 2019)的宝贵来源。尽管蛋白质在栗子干物质中所占比例较低,但它含有所有必需氨基酸(EAAs),具有高质量的营养成分。先前的研究表明,中国栗子的EAA/TAA比例约为40%,凸显了其作为生物活性肽的潜在价值(Fu et al., 2024; Yang et al., 2018)。鉴于市场对新型植物蛋白资源的兴趣日益增长,高效提取和纯化栗子蛋白并深入理解其结构特征具有重要意义。
植物种子是全球人类和动物的主要营养来源。种子储存蛋白含量是衡量营养价值的重要指标,不同植物物种之间差异显著(Yang et al., 2023)。在种子成熟过程中,植物会积累大量的储存蛋白。在大多数双子叶植物中,7S和/或11S球蛋白以及清蛋白构成胚或子叶中的主要储存蛋白(Mouzo et al., 2018; Shewry, 1995)。值得注意的是,11S球蛋白在植物种子中的分布更广,且由于其紧凑的六聚体构象和链间二硫键的存在,其结构稳定性优于7S球蛋白(Adachi et al., 2003; Garcia et al., 2005; Gravel & Doyen, 2023)。
了解新型植物蛋白资源的分子结构和组装行为对于阐明其营养和功能特性对于食品应用至关重要。许多研究聚焦于从不同植物中提取和鉴定11S球蛋白的结构特征。阴离子交换色谱(AEC)和大小排阻色谱(SEC)已被证明能有效获得高纯度的11S球蛋白组分(Albillos et al., 2008)。例如,Zhang et al.(2017)使用硫酸铵沉淀法从黑核桃中分离出11S球蛋白,随后通过疏水相互作用色谱(HIC)和SEC进一步纯化;Capraro et al.(2020)则使用盐提取结合离子交换色谱纯化了藜麦11S球蛋白(Chenopodin),并对其均六聚体三维结构进行了建模。
相比之下,关于栗子(Castanea mollissima Bl.)蛋白的研究主要集中在不同品种和提取方法对其技术和功能特性的影响上(Lv et al., 2015; Yang et al., 2018),而其分子组成和结构组织的详细信息仍然匮乏。在我们之前的工作中,通过碱性提取-等电沉淀(AE-IP)方法分离出了栗子蛋白。尽管分离过程中pH值发生变化,但超速离心分析证实蛋白质保持了其有序的四级结构,这从栗子蛋白组分中11S球蛋白六聚体的优势中得到了验证(Cui et al., 2026)。与大豆或藜麦球蛋白等研究较为充分的蛋白质不同,栗子11S球蛋白尚未进行系统的多尺度结构分析。这一知识空白严重限制了我们对它的组装行为和结构-功能关系的理解。填补这一知识缺口对于将栗子蛋白发展为具有竞争力的高价值植物蛋白资源至关重要。
因此,本研究旨在分离、纯化并系统地表征栗子11S球蛋白组分(Cn11S)的多尺度结构和功能潜力。通过AE-IP、AEC和SEC的连续过程获得了高纯度的Cn11S。使用FTIR、TEM和AFM研究了其二级结构和微观形态。首次构建了栗子11S亚基的单体和六聚体结构模型,深入的序列分析揭示了与蛋白质热稳定性、凝胶化行为和消化性相关的保守Cupin结构域。此外,通过质谱鉴定出模拟体外消化释放的肽序列,并通过计算机预测了其生物活性。综上所述,这些发现首次系统性地证明了栗子11S球蛋白作为功能性食品中促进健康生物活性肽的前体的潜力。