孵化器中雏鸡能够立即获得饲料和饮水，这会影响它们早期的新陈代谢和体温调节能力，但不同品种在后期行走能力方面存在差异

《Poultry Science》：Immediate access to feed and water in the hatcher influences early metabolic and thermoregulatory status in broiler chicks but is associated with breed-specific differences in later walking ability

　　鲁特格·斯梅茨 | 尼娅姆·克莱伦 | 埃夫琳·德莱齐 | 玛尔塔·洛伦索 | 弗兰克·A.M. 图伊滕斯 | 托马斯·诺顿 | 理查德·杜卡泰尔 | 卢克·杜沙托 | 冈瑟·安东尼斯森
比利时根特大学兽医学院病理生物学、药理学和动物医学系

**摘要**
为刚孵化的雏鸡提供即时的食物和水源（即早期喂养，简称EF）作为一种改善肉鸡肠道健康、表现和福利的管理策略，越来越受到关注。然而，EF对其短期和长期福利状况的影响尚未得到充分研究。本研究旨在评估孵化场孵化出的雏鸡采用EF策略对动物福利指标的影响，从而更全面地了解实施EF策略的潜在益处和后果。共有960只罗斯308（快速生长型）和960只哈伯德红肉鸡（缓慢生长型）在孵化场孵化后，被随机分配到三个处理组：T0组（立即提供食物和水源）、T1组（延迟24小时提供食物和水源）以及T2组（延迟48小时提供食物和水源）。短期福利评估包括孵化后最初几天的血浆葡萄糖水平、体温、首次进食和饮水时间以及血浆精氨酸加压素水平。在孵化后第11天和第18天，通过新型物体测试评估了恐惧反应。在生产周期结束时，对垫料质量和行走能力以及股骨头坏死病变进行了评分，以确定EF的潜在持久影响。数据使用混合模型按品种进行分析。在整个生产周期中，T0组的体重始终高于T2组，无论是快速生长型（p < 0.001）还是缓慢生长型（p = 0.009）的雏鸡。同样，T0组的平均日摄食量也倾向于高于T2组（快速生长型p = 0.070；缓慢生长型p = 0.004），而饲料转化率（FCR）没有显著差异。在两种肉鸡品种中，T0组的血浆葡萄糖水平在孵化后第1天（p = 0.031）和第2天（p = 0.005）均高于T2组。对于快速生长型雏鸡，T1组（p = 0.021）和T0组（p = 0.018）在孵化后10至48小时内的体温也高于T2组。对于缓慢生长型雏鸡，T0组在孵化后10至48小时内的体温高于T1组（p = 0.037）和T2组（p = 0.001）。在两种肉鸡品种中，大约50%的T0组和T1组雏鸡在孵化后28小时时已有食物储存在嗉囊中，这一比例在孵化后58小时增加至约100%。T0组的雏鸡开始饮水的时间更早，50%的雏鸡在孵化后16至18小时开始饮水，而所有雏鸡在孵化后36小时全部开始饮水。在快速生长型雏鸡中，孵化后48小时的血浆精氨酸加压素浓度T2组高于T1组（p = 0.011）和T0组（p = 0.002）；在缓慢生长型雏鸡中也观察到类似趋势，T2组的水平高于T1组（p < 0.001）。在新型物体测试和垫料质量方面，两种品种的处理组之间没有显著差异。然而，在孵化后第46天，T2组的缓慢生长型雏鸡表现出更好的步态评分（p = 0.044）和较低的股骨头病变发生率（p = 0.032）。

**结论**
在孵化场为雏鸡提供EF可以提前它们的进食和饮水时间，与商业孵化实践相比具有优势。这种提前有助于快速生长型和缓慢生长型雏鸡的多个短期福利指标，但对缓慢生长型雏鸡的长期运动能力有负面影响。

**引言**
过去十年中，禽肉已成为全球产量最大的肉类（粮农组织，2021年）。这一成功的原因之一是通过选择性育种实现了高生产效率和高胸肌产量。然而，消费者对动物生产链透明度的关注和需求增加，导致公众对当前生产方式的担忧日益加剧（欧盟，2023年；BEUC，2024年）。在传统的孵化系统中，肉鸡雏鸡通常在孵化后长达36至48小时内无法获得食物和水源。这主要是由于自然孵化窗口、孵化过程中的处理以及运输到育雏舍的时间所致（德容等，2017年）。最近，欧洲“更好鸡肉承诺”（BCC）的提出强调了商业鸡肉生产中动物福利的改进（欧洲鸡肉承诺组织，2023年）。关键措施包括孵化后尽早提供食物和水源，以及使用生长速度较慢的品种以减少生产相关疾病的发生。在这种情况下，孵化后立即提供食物和水源（通常称为早期喂养，简称EF）已成为多个国家的主要研究课题。目前采用的EF策略包括在孵化场内喂养（威勒姆森等，2010年）、在农场孵化（德容等，2020年）和在卵内喂养（乔安娜等，2017年）。先前的研究已经表明，农场内的EF可以改善肠道发育（盖拉等，2001年；耶加尼和科弗，2008年）和整体生产效率（德容等，2017年）。然而，关于福利效益的证据仍然有限。吉尔斯伯格等（2021年）和德容等（2020年）报告了EF的一些长期效应，包括早期喂养的快速生长型雏鸡足垫皮炎的发病率较低。相反，其他研究表明，EF可能导致雏鸡行走能力受损，因为体重增加是后期行走能力下降的已知预测因子（贝塞伊，2006年；哈特彻和卢姆，2020年）。除了长期福利指标外，短期生理指标也有助于评估EF对孵化场环境中雏鸡福利的短期影响。特别是血浆葡萄糖和精氨酸加压素（AVT）水平等指标可以反映孵化后首次自愿进食和饮水的时间。多项研究表明，血液中的葡萄糖浓度在进食后约0.5小时（萨沃里，1987年）、1.5小时（查姆布利等，1989年）或2小时（西蒙和罗塞尔林，1979年）内上升。此外，AVT可以作为水分摄入的稳健间接指标，因为它与血浆渗透压密切相关，并且在缺水后会上升（斋藤和格罗斯曼，1998年）。AVT通过降低肾小球滤过率和增加肾重吸收在维持渗透平衡中起关键作用。因此，早期喂养和禁食雏鸡之间的血糖和AVT差异出现的时间可以揭示首次自愿进食和饮水的大致时间。了解雏鸡在孵化后何时自发开始进食和饮水提供了重要信息，因为这可能反映了商业条件下生理驱动因素（如血糖和渗透压变化）刺激进食和饮水行为的时间点。这对于评估EF在孵化场的实际效果尤为重要，因为其有效性取决于雏鸡是否在孵化场的等待期内开始进食和饮水。如果雏鸡在正常应该开始进食和饮水的时间内无法获得这些资源，可能会发生营养剥夺，从而引起早期生活压力，这与后期恐惧行为的增加有关（埃里克森等，2016年；赫德伦德等，2019年）。由于福利结果往往取决于基因型，EF的影响也可能因基因型而异。例如，快速生长型雏鸡由于生长速度快而更容易出现运动问题（贝塞伊，2006年；哈特彻和卢姆，2020年），而缓慢生长型雏鸡则发展更平衡，运动问题和死亡率较低（迪克森，2020年；雷纳等，2020年）。因此，本研究旨在探究在孵化后24小时或48小时立即提供食物和水源是否对孵化场孵化的雏鸡具有短期和长期福利效益。短期福利指标反映了孵化后最初几天的雏鸡生理状态，而长期指标（如垫料质量、恐惧反应、步态和股骨头坏死（FHN）则在饲养期的最后一周进行测量。由于不同基因型的反应可能不同，因此进行了两项独立的实验：一项针对缓慢生长型的哈伯德红肉鸡，另一项针对快速生长型的罗斯308肉鸡，以评估每种雏鸡品种内的EF效果，而不是直接比较两种基因型。

**材料与方法**
**伦理声明**
本研究遵循欧洲第2010/63/EU号指令关于用于科学目的的动物保护规定进行。伦理批准由比利时梅雷尔贝克-梅勒的农业、渔业和食品研究所（ILVO）伦理委员会根据授权2022/429号予以批准。

**研究设计**
实验包括每种雏鸡品系的三种孵化后喂养处理方式，不同之处在于首次获得食物和水源的时间：孵化后立即提供（T0）、延迟24小时提供（T1）以及延迟48小时提供（T2）。每种雏鸡品系采用完全随机区组设计，以孵化时间为区组因素，共8个区组。每个区组包含在同一时间点孵化的雏鸡。每个区组内的雏鸡均匀随机分配到三个代表三种处理方式的篮子/围栏中。因此，每种处理方式各有8个独立重复实验，总共每种品系24个篮子/围栏。每个篮子/围栏包含40只雏鸡。

**动物管理**
罗斯308和哈伯德红肉鸡的18天孵化蛋从商业孵化场（Vervaeke-Belavi，Tielt，比利时）获得，并在ILVO研究中心的孵化器（X-Streamer2HOX-H，Petersime，Zulte，比利时）中共同孵化。孵化过程中，雏鸡均匀随机分配到三个处理组，确保基于孵化时间的平衡分配。为了追踪生物学年龄，孵化器每2小时打开一次，每次收集120只新生雏鸡并均匀分配到各个处理组。同一时间间隔内孵化的额外雏鸡被排除在实验之外。每个区组的生物学年龄以2小时时间间隔的中点为参考时间。被分配到某种处理方式的雏鸡被放入另一个类似的孵化器中。孵化过程中，孵化器温度根据蛋壳温度维持在99至99.5°F之间。通过口服施用的Thermochip? Mini温度微型芯片（MSD Animal Health，Boxmeer，荷兰）调节孵化器温度，以保持雏鸡体温在104–106°F之间。雏鸡在孵化器中的停留时间根据其体温进行调节。雏鸡被安置在无垫料的商业孵化篮中，并暴露在连续的LED条形灯下。根据处理组的不同，食物和水源自由供应，使用单独的开放式塑料槽（30厘米×5厘米）。水每8小时更新一次。

**数据收集**
所有雏鸡在第一名雏鸡孵化后48小时从孵化器中取出。从每个孵化篮中筛选出雏鸡并进行性别鉴定，以建立平衡的雄雌比例。选定的雏鸡随后转移到带有木屑作为垫料的地面围栏（2平方米）中。每种品种的雏鸡分别安置在单独的隔间中，每个围栏40只。由于采样原因，群体规模随时间减少，最高饲养密度记录在第42天和第49天（19.95千克/平方米）。饲养舍为封闭设施，配备自动气候控制系统，持续监测温度、相对湿度、二氧化碳（CO?）和氨（NH?）水平。通风、加热和冷却由中央计算机自动调节，以符合标准商业饲养协议。雏鸡在第一周暴露于23小时光照/1小时黑暗的环境中。从第二周开始，光照时间调整为18小时光照/6小时黑暗。第一周的舍内温度为32°C，之后每周降低4°C，直到降至22°C。这一温度在整个试验期间保持不变。每种品种的雏鸡分别安置在同一个饲养舍的不同隔间中，处理方式在每个隔间内随机分配。

**饲料**
接收EF的组别在孵化器中使用标准起始饲料。孵化后，鸡只的生长采用了三相喂养系统：雏鸡一进入地面围栏，就提供了起始饲料（d2-d11），之后切换到生长饲料（d11-d24），最后是育肥饲料（罗斯308肉鸡为d24-d42，哈伯德红肉鸡为d24-d49）。这种以小麦、玉米和豆粕为基础的饲料配方遵循了标准肉鸡饲料配方（表1），并依据育种者和Better Chicken Commitment指南（BEUC，2024年）制定，以满足每种品种的营养需求。起始饲料以糊状提供，而生长饲料和育肥饲料则以颗粒形式提供。在整个生长期间，饲料和水的供应都是自由取用的。

表1. 孵化期间及不同生长阶段罗斯308和哈伯德红肉鸡所喂饲料的营养成分计算值。

| 饲料类型 | 罗斯308 | 哈伯德红肉鸡 |
|------------|-------------------|------------------|
| 粗蛋白 (g/kg) | 20.5 | 20.2 |
| 粗脂肪 (g/kg) | 6.9 | 5.7 |
| 粗纤维 (g/kg) | 2.93 | 2.95 |
| 可代谢能量 (MJ/kg) | 11.8 | 11.6 |
| 消化赖氨酸 (g/kg) | 11.5 | 11.3 |
| 钙 (g/kg) | 9.0 | 9.0 |
| 可利用磷 (g/kg) | 4.3 | 4.3 |

数据收集
罗斯308肉鸡的养殖期为42天，而生长较慢的哈伯德红肉鸡则养殖了49天。在养殖期间，每天在d2、d11、d24（仅罗斯308）和d49（仅哈伯德红肉鸡）记录鸡只的活体重（BW）、提供的饲料量以及剩余饲料量，以评估日均饲料摄入量（ADFI；g/d）和饲料转化率（FCR）。每日记录死亡和淘汰的鸡只数量，以便根据试验中的动物日数校正性能指标。在出生后7天内，随机选取鸡只进行采样，这意味着每只鸡都在离壳后1天、2天、3天、4天和7天时被采样，无论它们是否还在孵化器中或已转移至围栏。在第5天和第6天没有进行采样。为了评估长期影响，包括步态评分和股骨头部病变情况，在生产周期结束时分别对快速生长的罗斯308肉鸡在第39天和第42天、生长较慢的哈伯德红肉鸡在第45天和第49天进行了采样。

**血糖和血浆血管加压素分析**
在出生后第1天、第2天、第3天、第4天和第7天采集血液样本。在第1天，每个围栏随机选取2只鸡进行血液采样。在所有后续采样日，每个围栏选取4只鸡进行宰杀。每次血液采集在1分钟内完成，以减少处理相关的压力。通过斩首从颈静脉获取约1毫升血液，立即转移至K3EDTA试管（13×75毫米，无脊Vacuette，Greiner Bio-One，Kremsmünster，奥地利）。样品在4°C下以3000×g的离心力离心10分钟以分离血浆，然后储存在-20°C下待进一步分析。血浆中的精氨酸血管加压素浓度通过酶联免疫吸附测定法（ELISA）（Chicken Arginine Vasopressin (AVP) ELISA Kit，BlueGene Biotech，上海，中国）测定。

此外，在第1天、第2天、第3天、第4天和第7天使用Accu-Chek? Guide血糖仪（Roche Diagnostics GmbH，Mannheim，德国）测定血糖浓度。

**体温**
孵化后的前48小时内，使用Thermochip? Mini热微芯片（MSD Animal Health，Boxmeer，荷兰）测量鸡只的体温。微芯片在孵化后立即口服给每篮中的两只鸡，每四小时使用兼容的微芯片读取器记录一次体温。对于每只鸡，绘制出0-48小时龄段的体温变化曲线，并计算曲线下的面积（AUC）。

**首次进食和饮水时间**
通过触摸嗉鸟和视觉检查，每四小时对每个篮中随机选取的8只鸡进行首次进食和饮水时间的估计。当通过触诊可以感觉到谷粒或小的饲料颗粒时，认为嗉鸟已充满饲料。为了评估孵化后自主饮水的开始时间，在T0组仅在饮水中添加了蓝色染料Lovit Blue C（Kaesler Nutrition GmbH，Cuxhaven，德国）。通过喙或鼻孔周围是否有蓝色染料来识别饮水的鸡只。饮水量的评估也在每四小时对每个篮中的8只鸡进行。

**新物体测试（NOT）**
新物体测试（NOT）在两个品种的第11天和第18天进行。第11天，在每个围栏放置一个空玻璃瓶；第18天则使用一个黄色塑料锥体作为新物体。开始测试时，观察者将鸡只赶到围栏后部并将物体放置在中心。然后观察者离开围栏，使用顶视摄像机（型号DH-SD1A203T-GN，Dahua?，杭州，中国）以每秒25帧的帧率和1920×1080像素的分辨率录制30分钟。之后使用EthoVision XT 18软件（Noldus Information Technology，Wageningen，荷兰）分析录像，在软件界面中手动定义一个以新物体为中心的30厘米半径的圆形区域。校准使用的是围栏的实际长度。活动检测基于像素变化跟踪，并应用了背景减除和压缩伪影滤镜。活动量量化为每帧内该区域移动的像素百分比。提取30分钟观察期内每帧的平均像素移动百分比用于统计分析。图1A（第11天）和图1B（第18天）展示了测试设置和EthoVision XT 18分析的代表性示例。

**步态评分**
步态评分在快速生长的肉鸡第39天、生长较慢的肉鸡第46天进行，使用了改进版的Welfare Quality?协议（Butterworth等人，2009年）。采用了Souza等人（2024年）的连续标记视觉模拟量表，该量表能够提供更精确和敏感的评分，并提高统计功效（Tuyttens等人，2009年；Tuyttens和Ampe，2025年）。量表由一条5厘米长的带状标记线组成，间隔0.1厘米，有五个标记点代表逐渐增加的步态问题程度，范围从0厘米（正常行走，无可见问题）到5厘米（严重跛行或无法行走）。标记点沿线条等距排列。从每个围栏随机选取10只鸡（总共240只），并轻轻鼓励它们在围栏内走约1米。步态评分由两名有经验的观察者独立完成，每位观察者根据鸡的行走能力在量表上标记一个点。此方法得出的评分范围是0到5分，每只鸡的最终步态评分是两名观察者评分的平均值。每只接受步态评估的鸡还进行了单独称重。

**垫料质量**
快速生长的肉鸡在第42天、生长较慢的肉鸡在第49天采集垫料样本。在每个围栏的三个标准化位置采集样本：靠近饲料器和饮水器的地方、围栏中心和围栏后部。从每个位置各采集等量（25克）垫料，合并成一个围栏的复合样本。从每个复合样本中取出固定量（25克）垫料，然后在105°C下干燥24小时，再次称重以确定水分含量。干物质百分比根据干燥过程中的重量损失计算。由于死亡和鸡只采样的原因，垫料含水量随时间变化，因此根据每个围栏的动物日数对结果进行了校正。最终值表示每只鸡每天对围栏总垫料含水量的平均贡献，以百分比（ADC%）表示。

**股骨头部坏死**
在第49天，从每个围栏随机选取2只鸡（总共48只），通过静脉注射Euthanimal? 20%将其处死。处死后，对左右股骨头部进行肉眼评估，观察股骨头部的坏死情况（FHN）。根据Ramser等人（2024年）的方法评估坏死程度。评分0表示股骨头部正常，表面光滑、有光泽的白色软骨，无异常。评分1表示仅有关节软骨帽分离，特征是关节软骨脱落或抬起，但没有结构塌陷或可见坏死。评分2表示严重病变，包括股骨头部塌陷或完全分解，符合晚期FHN。左右股骨的评分相加得到每只鸡的总FHN评分（范围0到4）。

**统计分析**
统计分析使用SAS版本6.4进行。由于本次试验的目的是评估每种肉鸡品种内的效果，而非比较品种，因此分别对每种肉鸡品种进行分析。此外，两种肉鸡基因型被饲养在不同的围栏中，并接受了特定品系的饲料，直接比较不合适。在整个试验中，围栏被视为实验单元，由于假设围栏内的重复测量结果相关，数据采用混合模型进行分析，其中重复次数和围栏作为随机效应，处理、性别、年龄以及处理-年龄和处理-性别的双向交互作用作为固定效应。使用事后Tukey检验进行处理间的成对比较，以获得调整后的p值。对于股骨评分，进行了非参数单因素分析（NPAR1WAY程序），将处理作为分类变量，股骨评分作为响应变量。统计显著性设定为p < 0.05。

**结果**
在快速生长的肉鸡中，T0组（p = 0.004）和T1组（p = 0.006）的日均饲料摄入量（ADFI）高于T2组。观察到年龄（p < 0.001）和处理（p < 0.001）对体重（BW）有显著影响，强烈的年龄×处理交互作用（p < 0.001）表明处理效果随孵化后年龄的变化而变化。估计显示T2组在出生后第2天和第42天的体重最低（表2）。T0组和T1组之间没有显著差异。处理组之间的饲料转化率（FCR）没有显著差异。

表2. 即时（T0）或延迟（T1，延迟24小时；T2，延迟48小时）获取饲料和饮水对罗斯308和哈伯德红肉鸡的性能参数（体重（BW）、日均饲料摄入量（ADFI）和饲料转化率（FCR）的影响。数据以最小二乘均值±标准误差表示。同一行中具有不同上标的均值具有显著差异（P < 0.05）。

**结论**
对于快速生长的肉鸡，T0组的日均饲料摄入量（ADFI）高于T1组和T2组（p = 0.004和p = 0.006）。观察到年龄（p < 0.001）和处理（p < 0.001）对体重（BW）有显著影响，强烈的年龄×处理交互作用（p < 0.001）表明处理效果随孵化后年龄的不同而变化。估计显示T2组在出生后第2天和第42天的体重最低（表2）。T0组和T1组之间没有显著差异。处理组之间的饲料转化率（FCR）没有显著差异。

**对于生长较慢的肉鸡，**T0组的日均饲料摄入量（ADFI）仅显示出高于T2组的趋势（p = 0.070）。与快速生长的鸡类似，T2组在所有时间点的体重都最低。T0组和T1组之间的体重没有显著差异。处理组之间的饲料转化率（FCR）没有显著差异（表2）。**第二天，T2组的血糖水平低于T0组（p = 0.003）和T1组（p = 0.008）。然而，第三天的血糖水平是T0组低于T2组（p = 0.011）。在随后的采样日（第4天和第7天），没有观察到显著的治疗差异。第二天的血浆精氨酸血管加压素浓度在不同处理组之间存在差异，T0组（p = 0.002）和T1组（p = 0.011）的浓度都低于T2组。**

**表3. Ross 308和Hubbard Redbro肉鸡在出生后第1天、第2天、第3天、第4天和第7天的血糖（mg/dl）以及第2天的血管加压素（pg/ml）水平受到即时（T0）或延迟供应饲料和水（T1，延迟24小时；T2，延迟48小时）的影响。数据以最小二乘均值±标准误差表示。同一行中带有不同上标的均值具有显著差异（P < 0.05）。**

**在生长较慢的肉鸡中，也分别分析了每个年龄组的治疗效果（表3）。在出生后第1天，T0组的雏鸡血糖浓度高于T1组（p = 0.015）和T2组（p = 0.016）。第二天，T0组和T1组的血糖浓度均高于T2组（p = 0.005）。第二天的血浆精氨酸血管加压素浓度在不同处理组之间存在差异，T2组的值高于T1组（p < 0.001）。**

**对于生长较快的肉鸡，出生后10至48小时的体温（以AUC衡量）T2组低于T1组（p = 0.021）和T0组（p = 0.018）（表4）。在T0组和T1组中，体温在出生后10至24小时略有下降，之后上升。在T2组中，体温在出生后10至24小时下降并稳定，但在出生后24至48小时仍低于其他处理组（图2A）。对于生长较慢的肉鸡，出生后10至48小时的体温（以AUC衡量）T1组（p = 0.037）和T2组（p = 0.001）低于T0组（表4）。T0组的体温在出生后48小时逐渐上升，而T1组的体温在出生后24小时下降后上升，于出生后48小时与T0组持平。相反，T2组的体温在出生后10至40小时下降，随后有所恢复，但在出生后48小时仍低于其他处理组（图2B）。**

**在出生后11天和第18天，Ross 308和Hubbard Redbro肉鸡的体温（AUC）和新物体测试（NOT）的结果。数据以温度曲线下的面积（AUC）的最小二乘均值±标准误差（LS-means ± SE）表示，NOT的值代表每帧移动的像素百分比的平均值。同一行中带有不同上标的均值具有显著差异（P < 0.05）。**

**在出生后第42天，各个处理组对 litter 水分含量的平均每日贡献（ADC%）和步态评分。股骨头坏死（FHN）以每个处理组的平均分数表示，这些处理组接受了不同的早期喂养处理（T0＝即时供应饲料；T1＝延迟24小时；T2＝延迟48小时）。**

**讨论：**
**在孵化器中为肉鸡雏鸡提供早期喂养（EF）主要加快了第一次进食和饮水的开始时间，并影响了生长较慢肉鸡的长期福利指标。接受EF的雏鸡在出生后48小时内开始进食和饮水，这导致出生后前48小时的血糖水平和体温升高，并在整个生产周期内表现更好。只有在生长较慢的肉鸡中观察到EF的负面长期福利效应，EF与步态受损和股骨头坏死发生率增加有关。**

**短期效应：**
**血糖水平反映了出生后获得饲料的时间。有饲料供应的雏鸡在第1天和第2天的血糖水平高于延迟供应的雏鸡。第3天，延迟48小时进食的快速生长雏鸡的血糖浓度高于即时或延迟24小时进食的雏鸡。第2天观察到的血糖下降与Wang等人（2014年）和Khosravinia和Manafi（2016年）的研究结果一致，他们也报告说出生后48小时的禁食期显著降低了血糖水平。血糖还可以作为首次进食时间的指标，因为在进食后0.5小时（Savory，1987年）、1.5小时（Chamblee等人，1989年）或2小时（Simon和Rosselin，1979年）就可以观察到血糖的增加。在我们的研究中，无论是快速生长还是生长较慢的雏鸡，在出生后第1天血糖水平较高的早期进食雏鸡表明，如果提供饲料，大多数雏鸡在出生后24小时内就已经开始进食。然而，这与我们的嗉囊填充评估结果部分矛盾，因为我们的评估表明只有10%的雏鸡在出生后24小时有进食迹象。然而，嗉囊触诊是一种相对不敏感的方法，因为早期摄入的颗粒很小且溶解迅速，可能导致首次进食时间的低估。第3天观察到的另一种模式是，延迟进食的快速生长雏鸡的血糖浓度高于早期进食的雏鸡，这可能反映了补偿性进食或葡萄糖稳态失调。之前的研究在整周内测量饲料摄入量并未支持补偿性进食的假设（Bhanja等人，2009年；Nielsen等人，2010年）。然而，有可能在短时间内饲料摄入量确实增加了，但在这些研究中平均每周一次的测量中没有检测到。我们认识到，需要在饲料供应后的最初24小时内更精确地测量首次进食量，以直接验证T2组雏鸡中首次进食反应增加的假设。**

**此外，研究表明，在出生后第11天和第18天，两种品系的肉鸡在新物体附近的活动水平没有显著差异（表4）。**
**对于快速生长的肉鸡，在出生后第42天，各个处理组对 litter 水分含量的平均每日贡献（ADC%）没有显著差异（表4）。同样，步态评分（p = 0.112）或股骨头坏死（FHN）（p = 0.103）也没有显著差异（表4，图4A）。在生长较慢的肉鸡中，出生后第49天的ADC%没有显著差异（表4）。然而，步态评分（p = 0.044）和FHN（p = 0.032）存在处理组差异，T2组的评分最高（表4，图4B）。**后两者在我们的研究中尤为重要，因为 AVT 的增加主要出现在饲料和水被剥夺的处理组中。Saito 和 Grossmann（1998）在产蛋鸡中也报告了类似的研究结果，表明在缺水 8 小时后，血浆 AVT 和血浆渗透压显著升高。Chaturvedi 等人（2000）报告称，当给日本鹌鹑拒绝供水 4 天时，血浆 AVT 增加了 2 到 6 倍。渗透压稳态的调节被认为是 AVT 的最重要功能，因为其增加主要是由血液渗透压的变化驱动的（Stallone 和 Braun，1986；Saito 等人，2001）。因此，血液渗透压和 AVT 可以作为鸟类渗透压应激的敏感指标。我们的研究结果表明，直到孵化后 48 小时才开始摄取水分的雏鸡可能比较早获得水分的雏鸡经历了更严重的脱水。不幸的是，我们的研究没有测量血浆渗透压，这限制了我们直接确认相关生理途径的能力。此外，Cornett 等人（2013）发现 AVPR1b 受体表达在下丘脑的促肾上腺皮质激素细胞上（Cornett 等人，2013），这表明 AVT 也可能刺激下丘脑-垂体-肾上腺（HPA）轴。这一点得到了其他研究的支持，这些研究表明脑内 AVT 的给药会增加皮质酮浓度（Masunari 等人，2016），从而表明 AVT 可能会对孵化后 2 天的延迟喂食雏鸡的应激反应有所贡献，尽管我们的研究没有测量这一点。

早期喂食影响了体温，因为在孵化后 48 小时被剥夺饲料和水分的雏鸡的体温比较早获得水分的雏鸡低。孵化后的前几天，雏鸡被认为是变温动物（van den Brand 等人，2010），这意味着它们依赖环境来维持体温在最佳范围内。然而，我们的结果和之前的研究表明，早期喂食可以增加代谢产热并提高雏鸡对寒冷应激的抵抗力。Van den Brand 等人（2010）发现，为雏鸡提供早期喂食可以使直肠体温升高约 1°C。此外，在暴露于寒冷应激（20°C）时，早期喂食的雏鸡在第二天和第三天的直肠体温下降幅度比延迟喂食的雏鸡小 0.5°C。尽管我们的数据中各处理组之间存在统计差异，但所有体温仍保持在 Aviagen 和 Hubbard LLC 指定的 40.1-41.1°C 的热舒适阈值范围内。没有雏鸡的体温超过临界的高热阈值（>42°C），因为高热已知会损害生长（Maman 等人，2019），增加饲料转化率（Maman 等人，2019），并对肠道（Quinteiro-Filho 等人，2010；Song 等人，2013）和免疫发育（Bartlett 和 Smith，2003）产生负面影响。因此，本研究观察到的体温升高不太可能对健康或福利产生负面影响。尽管如此，在孵化器中应用早期喂食时仍需仔细管理温度，以防止潜在的热应激相关问题。

早期喂食对肉鸡的恐惧反应没有显示出长期影响，因为本研究中没有观察到处理组之间的差异。研究表明，早期的生活压力可能会对以后的行为和福利产生负面影响。Hedlund 等人（2019）报告称，接受标准孵化程序的产蛋雏鸡在这个过程中表现出更高的皮质酮水平，而对照组雏鸡则没有。此外，这些皮质酮水平升高的雏鸡在约束测试的第 6 天和第 41 天的皮质酮增加幅度更大，表明它们的应激反应性更强，可能更害怕。在肉鸡雏鸡中，早期喂食可以被认为是一种减轻早期生活压力的策略，因为早期喂食的雏鸡的皮质酮水平较低（Wijnen 等人，2022）。然而，在将血浆皮质酮的波动解释为负面情感状态的直接指标时需要谨慎。皮质酮是一种生理激素，在营养失衡期间也会增加，它通过调节碳水化合物、蛋白质和脂质代谢来帮助维持体内平衡。因此，行为评估可以帮助确定皮质酮水平的升高是否与更大的恐惧性或情感状态的改变有关。Hollemans 等人（2018）报告称，早期喂食在孵化后第 3 天和第 30 天降低了恐惧性，表现为在僵直不动测试中的站立潜伏期缩短，但 Wijnen 等人（2022）发现孵化后第 13 天早期喂食雏鸡和对照组雏鸡在僵直不动方面没有差异。这些不一致性突显了需要进一步研究以澄清早期喂食对肉鸡雏鸡恐惧反应性的影响。

根据我们的结果，早期喂食与生长较慢的鸟类在生产周期结束时步态受损和股骨头坏死严重程度评分升高有关。步态能力受损是现代肉鸡生产中的主要问题，因为它与疼痛（Riber 等人，2021；Santos 等人，2022）、饥饿和口渴（Nielsen 等人，2023）以及经济损失（Xu 等人，2022）密切相关。步态不良的潜在机制尚未完全了解，可能是多因素导致的。然而，体重（Kestin 等人，2001；Yang 等人，2023）和快速生长率（Hartcher 和 Lum，2020；Zhou 等人，2024）是最强的步态不良预测因素，因为它们增加了未成熟骨骼的机械应力，使肉鸡容易出现运动问题（Paxton 等人，2014；Riber 和 Wurtz，2024）。我们的发现支持这一观点，因为在评分时观察到的步态差异也反映在体重上。FHN（股骨头坏死）是最常见的运动障碍（Zhao 等人，2020），与快速生长有关（Almeida Paz 等人，2009），并导致步态能力受损（Wijesurendra 等人，2017）。FHN 的特征是关节间隙变窄、小梁骨增厚、血液供应受损以及关节软骨分离（Zhao 等人，2020；Chen 等人，2022）。与快速生长的鸟类相比，生长较慢的鸟类表现出更高的活动和玩耍行为（Baxter 等人，2021），这可能会增加发育中的骨骼结构的机械负荷，从而可能导致 FHN 的发生。然而，这种假设需要谨慎对待，因为增加的运动活动也与后期骨骼质量的改善和步态问题的减少有关（Naeem，2025）。这种明显的不一致性表明，活动对骨骼健康的影响可能取决于具体情况，并受生长率、骨骼成熟度和环境条件的影响。步态能力受损可能会减少自然觅食行为（Pepper 和 Dunlop，2021；Riber 等人，2025），增加不活动时间，并增加接触性皮炎的风险（Weeks 等人，2000；Dawson 等人，2021），而这可能会因垫料质量差而进一步恶化。然而，虽然 de Jong 等人（2020）报告称早期喂食系统中的垫料干物质含量更高，因为肠道发育更好，排泄物更牢固，但在我们的研究中，两种测试品种的垫料质量没有处理组差异。这表明，生长较慢的鸟类在早期喂食下步态更差和 FHN 评分更高的现象似乎与其对生长的影响有关，而非垫料质量。有趣的是，在本研究中，快速生长的肉鸡在步态或 FHN 方面没有表现出处理组差异。可能是因为它们的快速生长已经使其具有较高的运动问题风险，几乎没有空间来检测额外的早期喂食效应。

我们的研究发现，孵化器中的早期喂食可以在短期内满足快速生长和生长较慢的肉鸡的营养需求，因为当饲料和水可用时，雏鸡在孵化后 48 小时内开始进食和饮水。这导致了两种品种的血糖水平、体温和体重升高，但长期来看却加剧了生长较慢鸟类的运动障碍。相比之下，在快速生长的肉鸡中，尽管早期喂食的鸟类体重较高，早期喂食对长期福利的影响微乎其微。这些基因型依赖的差异背后的机制需要进一步研究。总的来说，这些短期和长期的福利结果强调了在应用早期喂食时评估潜在福利权衡的重要性。

本研究得到了 VLAIO（佛兰德创新与创业）通过项目 HBC.2021.1063.C 的财政支持。

作者贡献声明：
Rutger Smets：撰写——原始草稿、可视化、方法论、调查、正式分析、数据管理、概念化。
Niamh Cleiren：调查、数据管理。
Evelyne Delezie：撰写——审阅与编辑、监督、资源管理、项目行政、资金获取、数据管理、概念化。
Marta Louren?o：撰写——审阅与编辑、监督、资源管理、项目行政、调查、资金获取、数据管理、概念化。
Frank A.M. Tuyttens：撰写——审阅与编辑、监督、资源管理、项目行政、方法论、资金获取、概念化。
Tomas Norton：监督、项目行政、数据管理。
Richard Ducatelle：撰写——审阅与编辑。
Luc Duchateau：撰写——审阅与编辑、方法论、正式分析、概念化。
Gunther Antonissen：撰写——审阅与编辑、监督、资源管理、项目行政、方法论、调查、资金获取、正式分析、数据管理、概念化。