《Redox Biology》:The Glutamate–Glutathione Axis in Neuropsychiatric Disorders and Cancer: From Shared Mechanisms to Non-Invasive Biomarkers
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谷氨酸是中枢神经系统中最丰富的兴奋性神经递质,也是体内一种关键的非必需氨基酸。它在维持神经系统兴奋-抑制平衡、调节全身代谢稳态以及参与免疫调节中起着核心作用。此外,它还是谷胱甘肽合成的前体。谷胱甘肽是生物体内一种重要的抗氧化和解毒分子,能够直接清除活性氧(RO
谷氨酸是中枢神经系统中最丰富的兴奋性神经递质,也是体内一种关键的非必需氨基酸。它在维持神经系统兴奋-抑制平衡、调节全身代谢稳态以及参与免疫调节中起着核心作用。此外,它还是谷胱甘肽合成的前体。谷胱甘肽是生物体内一种重要的抗氧化和解毒分子,能够直接清除活性氧(ROS)或有毒代谢物。谷胱甘肽功能障碍与氧化应激相关疾病有关。鉴于谷氨酸和谷胱甘肽在生理和病理状态下的关键作用,本文旨在系统地阐述谷氨酸与谷胱甘肽之间的代谢相互作用,此处称为谷氨酸-谷胱甘肽轴,作为一个基于已确立生物化学的综合概念框架。通过详细描述谷氨酸和谷胱甘肽的代谢相互作用,本综述探讨了它们相互影响的机制。此外,本文总结了谷氨酸-谷胱甘肽轴内的相关信号通路和调控机制,阐明了其在疾病发病机制中的关键作用,特别聚焦于神经精神疾病和癌症。最后,本文旨在综述使用磁共振成像(MRI)检测谷氨酸和谷胱甘肽的非侵入性方法,并介绍了研究人员(原文为“我们”)的专用序列。该方法旨在为相关疾病的早期诊断、疗效评估和治疗靶点开发提供一个有价值的无创成像工具。通过整合基础代谢网络、分子调控机制、疾病关联和临床检测技术,本综述旨在建立谷氨酸-谷胱甘肽轴的研究框架,推动该领域从基础研究到临床应用的更深入融合与进步。
1. 谷氨酸与GSH的代谢网络:从生物合成到相互转换
1.1. γ-谷氨酰循环:中心代谢枢纽
γ-谷氨酰循环是连接谷氨酸与GSH代谢的核心代谢相互作用。谷胱甘肽(GSH)被释放到细胞外,胞外酶γ-谷氨酰转移酶(GGT)催化将其γ-谷氨酰基团转移给一个受体氨基酸,形成γ-谷氨酰-氨基酸和半胱氨酰甘氨酸。γ-谷氨酰-氨基酸可被转运回细胞内并进一步代谢,释放出氨基酸和5-氧脯氨酸,后者可转化为谷氨酸重新用于GSH合成。同时,半胱氨酰甘氨酸被二肽酶水解为半胱氨酸和甘氨酸。在氧化应激条件下,特别是在代谢活跃的肿瘤细胞中,GGT表达显著上调。c-: glutamate/cystine antiporter)">在生理条件下,γ-谷氨酰循环有助于调节细胞内氨基酸稳态和氧化还原平衡。在神经系统疾病中,该循环通过调节GSH水平来影响氧化应激和神经炎症,同时也可能导致谷氨酸兴奋性毒性,加剧神经元损伤。在癌症中,该循环通过调节GSH代谢支持肿瘤细胞存活,增强对抗氧化应激的能力,从而促进肿瘤进展和治疗抵抗。
1.2. 谷氨酸的代谢
谷氨酸的生物合成主要通过以下途径:1)来自葡萄糖衍生的α-酮戊二酸(α-KG);2)来自谷氨酰胺(通过谷氨酰胺酶GLS水解);3)来自天冬氨酸;4)来自丙氨酸。神经元和星形胶质细胞通过谷氨酸/γ-氨基丁酸(GABA)-谷氨酰胺循环密切协作,这是维持谷氨酸稳态的关键过程。在该循环中,谷氨酰胺是谷氨酸的前体,由星形胶质细胞合成并释放,被神经元摄取以补充谷氨酸和GABA池。谷氨酸脱羧酶催化谷氨酸脱羧生成GABA。GABA随后通过GABA支路(GABA shunt)分解代谢,最终以琥珀酸进入三羧酸(TCA)循环。突触释放后,谷氨酸主要由星形胶质细胞通过兴奋性氨基酸转运蛋白(EAAT)摄取清除。星形胶质细胞专门表达谷氨酰胺合成酶,将谷氨酸转化为谷氨酰胺。因此,谷氨酸/GABA-谷氨酰胺循环代表了大脑中主要的代谢流,清晰地说明了神经元和星形胶质细胞在调节谷氨酸中的相互作用。

1.3. GSH的代谢
GSH的合成通过两个连续的ATP依赖步骤:首先,谷氨酸的γ-羧基和半胱氨酸在谷氨酸-半胱氨酸连接酶(GCL)催化下连接形成γ-谷氨酰半胱氨酸。随后,GSH合成酶(GS)催化γ-谷氨酰半胱氨酸的羧基与甘氨酸的氨基连接,生成GSH。GCL是异二聚体酶,包含一个73 kDa的催化亚基(GCLC)和一个31 kDa的调节亚基(GCLM)。作为GSH合成的第一个限速酶,GCL活性受细胞内GSH水平的负反馈调节和氧化应激下的正反馈调节。GS是第二个限速酶,其活性可被氧化应激增强,但不受细胞内GSH水平抑制。GSH的合成高度依赖于半胱氨酸的可用性。细胞外胱氨酸/半胱氨酸(Cys/CySS)氧化还原对是细胞半胱氨酸供应的主要决定因素:细胞外胱氨酸通过系统Xc-转运蛋白导入,在细胞内还原为半胱氨酸,并进入GSH合成。因此,对于大多数细胞类型,半胱氨酸的导入(而非谷氨酸的可用性)是GSH产生的限速步骤。GSH存在于不同的亚细胞区室,各池功能独立:约80-85%在细胞质,10-15%在线粒体,其余在内质网。线粒体GSH对线粒体氧化还原稳态和抗凋亡保护至关重要,而内质网定位的GSH通过蛋白质二硫键异构酶(PDI)活性控制氧化蛋白折叠。GSH还在蛋白质巯基氧化还原调节中通过S-谷胱甘肽化(即GSH可逆结合到反应性蛋白质半胱氨酸残基)发挥核心作用。细胞内GSH稳态主要通过氧化还原循环维持:GSH作为电子供体,在谷胱甘肽过氧化物酶催化下还原过氧化物为H2O,自身被氧化为氧化型谷胱甘肽(GSSG)。GSSG随后在谷胱甘肽还原酶作用下利用烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)作为辅因子还原为GSH,从而维持高GSH/GSSG比,保护细胞免受氧化应激损伤。除了氧化还原循环,GSH稳态还涉及两种机制不同的酶促过程:1)通过GGT的细胞外GSH水解;2)通过谷胱甘肽S-转移酶(GST)的细胞内GSH结合。特别是谷胱甘肽S-转移酶P(GSTP)亚型,作为氧化还原信号传导的中心枢纽,通过两种互补机制运作:(a)依赖于结合的亲电试剂解毒;(b)催化蛋白质S-谷胱甘肽化,这是响应氧化和亚硝化应激的可逆GSH加成反应,调节蛋白质结构和功能。
1.4. 谷氨酸与GSH之间的相互转换
1.4.1. 谷氨酸作为GSH合成的前体
如前所述,谷氨酸和半胱氨酸在GCL作用下连接形成γ-谷氨酰半胱氨酸,然后与甘氨酸结合合成GSH。从谷氨酸合成GSH的能力根据细胞需求动态调节。在大脑中,神经元主要通过谷氨酸/GABA-谷氨酰胺循环获取谷氨酸。在氧化应激期间,该循环增强,优先将谷氨酸导向GSH合成而非神经递质通路,从而升高神经元GSH水平以抵抗氧化损伤。星形胶质细胞富含GS,促进谷氨酸向GSH转化,并向神经元释放二肽半胱氨酰甘氨酸。这一过程建立了一个“神经元-胶质细胞”协作抗氧化系统,为神经元提供GSH合成的直接前体,增强其整体抗氧化能力。
1.4.2. GSH降解与谷氨酸再循环
GSH可通过特定的酶促反应降解为更简单的代谢物。如1.1节所述,GGT介导的γ-谷氨酰键水解启动了细胞外γ-谷氨酰循环,最终将半胱氨酸、甘氨酸和谷氨酸回收到细胞内用于新的GSH合成。值得注意的是,在谷氨酸-谷胱甘肽轴的背景下,GGT活性代表了从输出的GSH再生谷氨酸的重要途径。这种GGT催化的GSH降解具有多种功能:调节细胞内GSH水平以维持氧化还原稳态;提供可进入其他代谢途径的谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸,供应必需氨基酸;通过促进外源性和内源性毒素的清除支持细胞解毒。GSH的合成和降解构成了一个动态平衡。通过调节GSH水平,细胞维持其氧化还原状态并抵御氧化应激。在神经元脑代谢背景下,有假说提出GSH在特定病理条件下(当GSH周转加速时)可能充当谷氨酸稳态的条件性缓冲池。其机制基础在于γ-谷氨酰循环的结构:因为GSH在组成上三分之一是谷氨酸,在神经元中以毫摩尔浓度存在且半衰期相对较短,药理学抑制从该循环中释放谷氨酸的酶(GGT和OPLAH)可将细胞内神经元谷氨酸水平降低25-50%,并抑制原代皮层神经元的微小兴奋性突触后电位(mEPSC)频率,而抑制GSH生物合成则具有相反效果——升高胞质谷氨酸并增强mEPSC频率。值得注意的是,当谷氨酰胺-谷氨酸穿梭受到药理学干扰时,谷胱甘肽循环也被证明能够补偿胶质细胞来源的谷氨酰胺的减少,这表明它可能是在代谢应激条件下维持突触谷氨酸供应的次级储备。然而,这仍然是一个工作假说,而非体内确立的机制。经典的代谢证据更可靠地支持谷氨酸维持GSH合成的方向,而非相反。实际上,在神经元中,半胱氨酸(而非谷氨酸)是GSH合成的限速底物,神经元GSH水平主要由通过EAAC1转运蛋白的半胱氨酸可用性决定,而非细胞内谷氨酸供应。上述潜在的双向性可能与脑组织中最相关,在脑组织中严格控制细胞外谷氨酸至关重要,特别是在涉及GSH缺乏和谷氨酸能失调的神经精神疾病中,值得进一步实验研究。
2. 调控谷氨酸-GSH轴的信号通路
调控谷氨酸和GSH代谢的信号通路并非孤立运作,而是形成一个相互连接的调控网络,其中多个转录因子汇聚于共享的启动子元件,相互交叉调节,并表现出细胞类型和背景依赖的相互作用。这些通路对GSH合成的净效应取决于激活信号和抑制信号之间的平衡。级联放大机制(即过量谷氨酸触发ROS生成,从而消耗GSH并进而损害谷氨酸转运蛋白)也构成了代谢与信号传导之间调控串扰的一种形式。
2.1. 谷氨酸与GSH之间的级联放大
谷氨酸与GSH之间的相互作用可能是一个恶性的放大循环。由于过量释放或摄取减少而导致的细胞外谷氨酸水平升高,可能引起神经元和星形胶质细胞上谷氨酸受体的过度激活,并导致这些细胞内的细胞内钙浓度升高。其结果是,几种钙依赖性酶可能以不受控制的方式被激活,导致细胞死亡。活性氧(ROS)是这些酶过程的副产物和介质,随后消耗GSH。此外,ROS氧化蛋白质,如神经元和胶质谷氨酸转运蛋白。这种氧化损害谷氨酸再摄取,进一步促进细胞外谷氨酸积聚。这些事件共同强化了兴奋性毒性和氧化损伤的恶性循环。
2.2. 调控信号通路
2.2.1. Nrf2信号通路
核因子E2相关因子2(Nrf2)是控制细胞抗氧化防御系统的关键转录因子。它通过与下游靶基因启动子区域中的抗氧化反应元件(ARE)结合,调节包括参与GSH合成的基因在内的众多抗氧化基因的表达。在基础条件下,Kelch样ECH相关蛋白1(Keap1)作为Cullin3 E3泛素连接酶复合体的衔接蛋白,结合Nrf2并靶向其进行泛素介导的蛋白酶体降解,从而抑制抗氧化基因表达并将Nrf2隔离在细胞质中。在氧化应激下,ROS修饰Keap1上的特定半胱氨酸残基,诱导构象变化,破坏其结合Nrf2的能力。这种稳定化使Nrf2能够易位进入细胞核,在那里与小Maf蛋白(sMaf)形成异二聚体并结合ARE。这种激活上调了GSH合成相关基因的表达,特别是GCLC和GS,从而增强GSH的产生。磷脂酰肌醇3-激酶/蛋白激酶B(PI3K/AKT)信号通路也促进Nrf2核转位。抑制PI3K/AKT信号会降低Nrf2转录活性,而过表达组成型活性AKT则会增强其活性。
2.2.2. AP-1信号通路
激活蛋白1(AP-1)是由Fos和Jun蛋白组成的异二聚体转录因子,结合于称为TPA反应元件(TRE)的特定DNA序列。人类GCLC和GCLM基因的启动子区域存在多个TRE结合位点。研究表明,TRE元件参与调节GCL基因的基础和诱导表达。c-Jun的磷酸化对于TRE介导的GCL诱导至关重要。研究表明,抑制c-Jun N-末端激酶(JNK)可降低c-Jun磷酸化水平,继而阻断GCL诱导以及c-Jun与TRE位点的结合。在氧化应激下,AP-1和Nrf2可以协同作用:两条通路同时被激活,由于GCL启动子同时含有TRE和ARE元件,从而对GCLC/GCLM提供叠加的转录上调。
2.2.3. NF-κB信号通路
核因子-κB(NF-κB)是一个参与多种生物过程(包括炎症反应、免疫调节和细胞存活)的关键转录因子。在其非活性状态下,NF-κB(最常见为p50/p65异二聚体)通过与抑制蛋白IΚβ相互作用被隔离在细胞质中。在氧化还原失衡条件下,升高的ROS可以激活上游激酶,如TGF-β激活激酶1(TAK1)或直接修饰IκB激酶(IKK)复合体(由催化亚基IKKα和IKKβ以及调节亚基IKKγ组成)。IKKβ亚基的激活导致IΚβ磷酸化,从而触发其泛素化和随后的蛋白酶体降解。IΚβ的降解释放NF-κB,使其易位进入细胞核,启动下游靶基因的转录,包括GCLC和GCLM,从而促进GSH合成。相反,IKKβ表达减少会抑制NF-κB激活,削弱其与GCLC/GCLM启动子区域的结合,从而下调其表达。重要的是,NF-κB和Nrf2之间的关系是背景依赖的:在急性氧化应激的正常细胞中,它们协同作用以放大抗氧化反应;在具有组成型NF-κB激活的癌细胞中,NF-κB可以独立于Nrf2驱动GSH合成,导致化疗耐药。
2.2.4. 谷氨酸/胱氨酸反向转运系统
谷氨酸/胱氨酸反向转运系统(系统Xc-)由催化亚基SLC7A11和调节亚基SLC3A2组成,是抵御氧化应激的主要防御机制。该反向转运蛋白促进细胞内谷氨酸与细胞外胱氨酸的交换。进入细胞后,胱氨酸迅速还原为半胱氨酸,后者是GSH合成的关键前体。研究表明,激活转录因子3(ATF3)通过结合其启动子来抑制SLC7A11转录,从而限制GSH合成。相反,Nrf2(抗氧化反应的关键转录调节因子)通过结合其启动子内的ARE来增强SLC7A11表达,从而促进GSH合成。
2.2.5. TGF-β/Smad信号通路
经典的TGF-β/Smad信号通路通常激活基因转录。然而,在特定背景下,TGF-β发挥抑制作用。核心机制涉及TGF-β受体激活导致Smad3磷酸化,促进Smad3/Smad4复合体的形成和核转位。该复合体不直接结合基因启动子,而是诱导转录抑制因子ATF3的表达。ATF3随后作为效应子,直接结合基因启动子区域并募集共抑制复合体以抑制基因转录。基于此机制,研究表明TGF-β1激活Smad3/Smad4复合体,上调ATF3表达,从而减弱Nrf2信号传导。在GSH合成中,TGF-β1上调的ATF3竞争性地结合ARE,抑制Nrf2转录活性。这导致Nrf2靶基因GCL的表达减少,GSH合成降低,最终降低细胞抗氧化能力并伴随ROS积聚。值得注意的是,在此过程中TGF-β1本身并不影响Nrf2蛋白水平。
2.2.6. p53信号通路
p53基因因其在促氧化和抗氧化功能中的双重作用,长期以来被视为基因组的守护者。在相对较低的表达水平,p53诱导其靶基因p21,后者竞争性地结合Keap1。这种相互作用破坏了Keap1介导的Nrf2泛素化和降解,从而稳定Nrf2蛋白,增强其核转位,并促进细胞保护基因的表达以支持细胞存活。相反,在高p53表达条件下,p53直接与Nrf2相互作用形