《Probiotics and Antimicrobial Proteins》:Effects of Compound Yeast Culture on the Intestinal Morphology, Intestinal Function, and Microorganisms of Weaned Lambs
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酵母培养物是一种安全环保的营养补充剂,可提升单胃动物的抗氧化能力、免疫功能及肠道健康。本研究探讨了复合酵母培养物与酵母源对断奶羔羊抗氧化能力、免疫功能及肠道微生物的影响。研究人员将18只断奶羔羊随机分为3组:基础饲粮组(NYC)、基础饲粮+40 g/d酵母源组
酵母培养物是一种安全环保的营养补充剂,可提升单胃动物的抗氧化能力、免疫功能及肠道健康。本研究探讨了复合酵母培养物与酵母源对断奶羔羊抗氧化能力、免疫功能及肠道微生物的影响。研究人员将18只断奶羔羊随机分为3组:基础饲粮组(NYC)、基础饲粮+40 g/d酵母源组(DYC)、基础饲粮+50 g/d复合酵母培养物组(GYC),每组6个重复,每个重复1只羔羊,试验期42 d。结果显示,DYC组与GYC组的绒毛高度(Villus Height, VH)及绒毛高度/隐窝深度比(Villus Height-to-Crypt Depth Ratio, VH/CD)均显著升高(P<0.05),DYC组隐窝深度(Crypt Depth, CD)显著降低(P<0.05);两组空肠组织胰高血糖素样肽-2(Glucagon-like Peptide-2, GLP-2)、胰岛素样生长因子1(Insulin-like Growth Factor 1, IGF-1)及黏蛋白2(Mucin 2, MUC2)mRNA表达量均显著上调,血清总抗氧化能力(Total Anti-oxidizing Capability, T-AOC)、谷胱甘肽过氧化物酶(Glutathione Peroxidase, GSH-Px)、总超氧化物歧化酶(Total Superoxide Dismutase, T-SOD)及过氧化氢酶(Catalase, CAT)活性均显著升高(P<0.05)。DYC组与GYC组酸性磷酸酶(Acid Phosphatase, ACP)活性、免疫球蛋白G(Immunoglobulin G, IgG)含量、分泌型免疫球蛋白A(Secretory Immunoglobulin A, sIgA)含量,以及白细胞介素-10(Interleukin-10, IL-10)、转化生长因子-β(Transforming Growth Factor Beta, TGF-β)、B细胞激活因子(B-cell Activating Factor, BAFF)、增殖诱导配体(A Proliferation-inducing Ligand, APRIL)、趋化因子配体25(Chemokine Ligand 25, CCL25)、诱导型一氧化氮合酶(Inducible NO Synthase, iNOS)及聚乳酸-羟基乙酸共聚物(Poly(lactic-co-glycolic Acid), plgA)mRNA表达量均显著升高(P<0.05);GYC组ACP含量、APRIL及plgA mRNA表达量亦显著高于对照组(P<0.05)。DYC组与GYC组空肠微生物标志物与肠道屏障相关指标呈正相关。综上,复合酵母培养物与酵母源均可同等程度改善断奶羔羊的抗氧化能力、免疫功能及肠道健康。
论文解读:《复合酵母培养物对断奶羔羊肠道形态、肠道功能及微生物的影响》
该研究针对集约化养殖中早期断奶引发羔羊应激、肠道发育受损及腹泻率升高的产业问题,以替代抗生素为目标,探究复合酵母培养物对反刍动物断奶阶段肠道健康的调控效应。研究由内蒙古农业大学团队完成,发表于《Probiotics and Antimicrobial Proteins》,为羔羊无抗养殖提供了理论支撑。
关键技术方法
研究采用单因素完全随机设计,选取18只2月龄健康公羔(杜泊羊×小尾寒羊杂交后代),随机分为基础饲粮组(NYC)、基础饲粮+40 g/d酵母源组(DYC)、基础饲粮+50 g/d复合酵母培养物组(GYC),每组6个重复,试验期42 d。通过苏木精-伊红染色观察空肠形态,实时荧光定量PCR检测基因表达,16S rRNA测序分析菌群结构,结合血清生化与抗氧化指标评估综合效应。
研究结果
血液常规指标:DYC组平均血小板体积(Mean Platelet Volume, MPV)显著升高(P<0.05),GYC组淋巴细胞(Lymphocyte, LYM)与嗜碱性粒细胞(Basophil, BAS)计数显著升高(P<0.05),提示两种酵母产品分别通过增强凝血功能与特异性免疫缓解应激。
血清生化指标:试验第42天,DYC与GYC组甘油三酯(Triglyceride, TRIG)含量显著降低(P<0.05),总胆汁酸(Total Bile Acid, TBA)含量显著升高(P<0.05),肝肾功能相关指标恢复至正常范围。
空肠形态结构:DYC组VH与VH/CD显著升高、CD显著降低(P<0.05);GYC组VH与VH/CD显著升高(P<0.05),两组均改善了空肠黏膜上皮结构。
肠道发育相关基因:DYC与GYC组空肠GLP-2与IGF-1 mRNA表达量均显著上调(P<0.05),促进肠道细胞增殖与黏膜修复。
肠道屏障功能:两组MUC2 mRNA表达量显著升高(P<0.05),GYC组增幅高于DYC组,增强了黏液层物理屏障。
抗氧化能力:第42天,DYC与GYC组血清T-AOC、GSH-Px、T-SOD、CAT活性显著升高(P<0.05),丙二醛(Malondialdehyde, MDA)含量显著降低(P<0.05);GYC组空肠T-SOD与CAT活性更高,氧化损伤抑制效果更优。
非特异性免疫与免疫球蛋白:DYC组ACP活性、IgG与sIgA含量显著升高(P<0.05);GYC组ACP活性进一步升高,强化了先天免疫防御。
免疫相关基因表达:两组IL-10与TGF-β mRNA表达量显著上调(P<0.05),TLR-4、TNF-α等促炎因子及相关信号通路基因表达显著下调,平衡了炎症稳态。
sIgA分泌通路基因:DYC组APRIL、BAFF、CCL25、iNOS、Integrinα4β7及PIGR mRNA表达量显著升高;GYC组APRIL、BAFF、CCL25、iNOS及PIGR表达量显著升高,促进了黏膜免疫应答。
空肠微生物组成与功能:DYC与GYC组α多样性指数(Shannon、Simpson)显著升高(P<0.05);β多样性显示两组菌群结构与对照组分离。门水平上,DYC组Patescibacteria丰度升高,Verrucomicrobiota与Proteobacteria丰度降低;GYC组Desulfobacterota、Patescibacteria等丰度升高,Actinobacteria丰度降低。属水平上,DYC组富集Olsenella、Ruminococcus gauvreauii等菌属;GYC组富集未培养细菌、Christensenellaceae_R7_group等菌属。功能预测显示,GYC组富集核糖体、氨基酸代谢等通路,DYC组富集ABC转运蛋白、淀粉蔗糖代谢等通路。
微生物与表型相关性:Olsenella丰度与VEGFA mRNA表达正相关,g_Eubacterium_coprostanoligenes_group与MUC2 mRNA表达正相关;Ruminococcus、NK4A214_group等与肠道屏障指标负相关。
讨论与结论
讨论部分指出,酵母培养物通过β-葡聚糖、甘露聚糖等活性成分调控肠道发育、抗氧化与免疫通路,其效应与代谢产物(如有机酸、核苷酸)介导的菌群重塑密切相关。两种酵母产品虽菌群组成存在差异,但最终均通过增强屏障功能、抑制炎症、优化菌群结构实现等效的健康调控。
结论明确:在断奶羔羊饲粮中添加复合酵母培养物或酵母源产品,可通过改善空肠菌群、增强免疫应答、维持肠道屏障完整性、促进肠道发育及提升抗逆性,同等程度缓解断奶应激,为羔羊无抗健康养殖提供了可替代抗生素的有效策略。