鼠李糖乳杆菌GG(Lactobacillus rhamnosus GG,LGG)对甲氨蝶呤诱导的氧化性肾毒性的保护作用

《Probiotics and Antimicrobial Proteins》:Protective Effects of Lactobacillus rhamnosus GG Against Methotrexate-Induced Oxidative Renal Toxicity

【字体: 时间:2026年05月20日 来源:Probiotics and Antimicrobial Proteins 4.4

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  甲氨蝶呤(Methotrexate,MTX)是广泛用于恶性肿瘤及自身免疫性疾病治疗的常用药物,但其可导致肾组织发生显著的氧化损伤与功能障碍。鼠李糖乳杆菌GG(Lactobacillus rhamnosus GG,LGG)是已被充分表征的益生菌株,具有维持抗氧化

  
甲氨蝶呤(Methotrexate,MTX)是广泛用于恶性肿瘤及自身免疫性疾病治疗的常用药物,但其可导致肾组织发生显著的氧化损伤与功能障碍。鼠李糖乳杆菌GG(Lactobacillus rhamnosus GG,LGG)是已被充分表征的益生菌株,具有维持抗氧化平衡的生物学活性。本研究旨在探究LGG对MTX诱导肾损伤的影响。研究人员将雄性Sprague–Dawley大鼠分为4组:生理盐水处理的对照组、单独MTX给药组、MTX联合低剂量LGG给药组、MTX联合高剂量LGG给药组。MTX以20 mg/kg体重的单次腹腔注射方式给药,LGG以低剂量1×109CFU/天、高剂量5×109CFU/天的剂量连续口服5天。第6天采集血液与肾组织样本,检测氧化指标、酶性抗氧化应答及肾功能标志物。研究结果显示,MTX显著升高血清肾小球滤过标志物水平,并提升肾组织氧化应激关键指标;同时MTX破坏肾离子稳态,表现为钠/钾-ATP酶(sodium/potassium-ATPase)、对氧磷酶(paraoxonase)活性下降,乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase)、碳酸酐酶(carbonic anhydrase)、黄嘌呤氧化酶(xanthine oxidase)、髓过氧化物酶(myeloperoxidase)及精氨酸酶(arginase)活性升高。与之相反,LGG干预可有效逆转MTX诱导的血清与肾组织所有生化改变。研究人员据此认为,LGG可对大鼠MTX诱导的氧化性肾毒性提供显著保护。
本研究发表于《Probiotics and Antimicrobial Proteins》,聚焦甲氨蝶呤(MTX)临床应用中的肾毒性难题。MTX是高剂量化疗与自身免疫病治疗的核心药物,约90%经肾脏排泄,易在肾小管形成结晶并诱发氧化应激(OS)、炎症与急性肾损伤(AKI),现有预防手段仍无法完全规避风险。鼠李糖乳杆菌GG(LGG)作为经典益生菌,已被证实可通过增强超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)等内源性抗氧化酶活性发挥多器官保护作用,但其对MTX诱导肾损伤的保护效应尚未明确。研究人员通过构建大鼠急性肾损伤模型,系统评估LGG对MTX肾毒性的干预作用,证实其可全面改善肾功能与氧化损伤表型,为临床肾毒性防治提供了益生菌干预的新证据。
研究采用的关键技术方法包括:32只2–2.5月龄雄性Sprague–Dawley大鼠随机分为对照组、MTX单独给药组、MTX联合低剂量LGG组(1×109CFU/天)、MTX联合高剂量LGG组(5×109CFU/天),每组8只;MTX以20 mg/kg单次腹腔注射,LGG连续口服5天;第6天采集血清与肾组织,分别检测肾功能标志物(尿素、肌酐、尿酸、尿素/肌酐比值)、非酶与酶性抗氧化系统指标(还原型谷胱甘肽GSH、GPx、谷胱甘肽还原酶GR、谷胱甘肽-S-转移酶GST)、氧化损伤产物(脂质过氧化LPO、晚期氧化蛋白产物AOPP、活性氧ROS)、离子稳态相关酶(钠/钾-ATP酶、碳酸酐酶、精氨酸酶)及炎症相关酶(髓过氧化物酶MPO、黄嘌呤氧化酶XO)活性;所有数据采用单因素方差分析与Tukey事后检验进行统计学比较。
研究结果如下:
血清肾功能标志物:MTX组尿素、肌酐、尿素/肌酐比值(UCR)、尿酸水平较对照组显著升高(p<0.0001–p<0.01),提示肾小球滤过功能急性受损;低、高剂量LGG干预组上述指标均较MTX组显著降低(p<0.0001–p<0.001),且两剂量组间无显著差异。
肾组织谷胱甘肽系统与抗氧化酶:MTX组肾组织GSH水平及GPx、GR、GST活性较对照组显著下降(p<0.01–p<0.0001),反映抗氧化防御体系被削弱;LGG干预组上述指标均显著恢复(p<0.0001–p<0.001),仅GST活性在高剂量组略高于低剂量组(p<0.05)。
氧化损伤产物:MTX组肾组织LPO、AOPP、ROS水平较对照组显著升高(p<0.01–p<0.0001),提示膜脂质、蛋白质及整体氧化负荷加剧;LGG干预组上述指标均较MTX组显著降低(p<0.05–p<0.0001),两剂量组间无显著差异。
一线抗氧化酶与膜损伤标志物:MTX组SOD、过氧化氢酶(CAT)、对氧磷酶(PON)活性显著下降(p<0.0001),乳酸脱氢酶(LDH)活性显著升高(p<0.0001),反映细胞损伤与抗氧化能力耗竭;LGG干预组SOD、CAT、PON活性回升(p<0.0001–p<0.01),LDH活性回落(p<0.0001),两剂量组间无显著差异。
炎症与离子稳态相关酶:MTX组髓过氧化物酶(MPO)、黄嘌呤氧化酶(XO)活性显著升高(p<0.0001),钠/钾-ATP酶活性显著下降(p<0.01),提示中性粒细胞浸润、嘌呤代谢紊乱与离子泵功能障碍;LGG干预组MPO、XO活性显著降低(p<0.0001),钠/钾-ATP酶活性显著回升(p<0.001),两剂量组间无显著差异。
其他代谢酶与纤维化标志物:MTX组碳酸酐酶(CA)、精氨酸酶活性及一氧化氮(NO)、羟脯氨酸(Hypro)水平显著升高(p<0.001–p<0.0001),提示酸碱失衡、L-精氨酸代谢紊乱、胶原沉积增加;LGG干预组上述指标均较MTX组显著降低(p<0.01–p<0.0001),两剂量组间无显著差异。
讨论部分指出,MTX肾毒性源于其肾小管排泄特性引发的结晶沉积、氧化应激级联与炎症激活,与既往研究结论一致。LGG的保护作用可能通过其自身的抗氧化活性、增强宿主内源性抗氧化酶表达、调节氧化还原平衡实现,虽未直接验证肠道菌群-肾脏轴机制,但现有结果与该轴调控肾损伤的报道相符。研究局限性在于未开展肾组织病理学检查、未独立验证LGG活菌数,且仅反映急性短期效应,长期慢性模型的疗效仍需进一步验证。
结论部分表明,单次肾毒性剂量MTX可诱导大鼠肾组织发生显著的功能、生化与氧化损伤,而口服LGG在低、高剂量下均可提供显著保护,具体表现为改善经典肾功能标志物、恢复抗氧化防御体系、减轻脂质与蛋白质氧化损伤、降低膜损伤与硝基氧化应激水平。该结果为MTX肾毒性的益生菌干预提供了实验依据,后续需在慢性模型与临床研究中进一步验证其长期疗效与应用潜力。
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