牙龈卟啉单胞菌HmuS蛋白的生化与功能表征揭示其参与血红素代谢

《Frontiers in Microbiology》:Biochemical and functional characterization of Porphyromonas gingivalis HmuS protein reveals its participation in heme metabolism

【字体: 时间:2026年05月20日 来源:Frontiers in Microbiology 4.5

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  背景:牙龈卟啉单胞菌(Porphyromonas gingivalis)缺乏完整的血红素生物合成途径,且不利用铁载体获取铁,其从血红素中萃取铁的确切机制尚不清楚。本研究旨在表征牙龈卟啉单胞菌HmuSPg蛋白,并将其特性与脆弱拟杆菌(Bacteroides fr

  
背景:牙龈卟啉单胞菌(Porphyromonas gingivalis)缺乏完整的血红素生物合成途径,且不利用铁载体获取铁,其从血红素中萃取铁的确切机制尚不清楚。本研究旨在表征牙龈卟啉单胞菌HmuSPg蛋白,并将其特性与脆弱拟杆菌(Bacteroides fragilis)同源蛋白进行比较。 方法:研究人员采用紫外-可见光谱法验证血红素结合并追踪血红素代谢过程;利用高效液相色谱(HPLC)或液相色谱-质谱(LC-MS)测定细菌细胞及沉积色素中的卟啉水平,通过原子吸收光谱或菲啰嗪法检测铁含量;借助RNA测序(RNA-seq)、实时荧光定量PCR(RT-qPCR)、蛋白质免疫印迹(Western blotting)及酶活性测定,分析hmuSPg基因缺失对其他基因表达的影响。 结果:尽管HmuSPg含有钴螯合酶特征结构域,因而可归为I类螯合酶家族,但该蛋白表现出独特特征。HmuSPg是由6个结构域组成的大分子蛋白,结构建模预测其具有两个潜在的血红素结合位点。体外实验显示,HmuSPg可结合血红素,且其体外参与血红素代谢的过程受NADH及牙龈卟啉单胞菌内膜组分的刺激。在液体培养基中生长的ΔhmuSPg突变株细菌细胞及沉积于细胞表面的色素中,原卟啉IX(PPIX)含量显著降低,提示该突变株可能丧失了从血红素中释放铁并生成PPIX的能力。hmuSPg基因失活会降低生物膜形成能力,并诱导参与血红素摄取与稳态的基因表达发生改变。 结论:在特定体内环境下,当血红素仍可获取、宿主蛋白高效螯合铁且细胞内铁储备耗竭时,HmuSPg可能参与血红素代谢过程。
这篇发表于《Frontiers in Microbiology》的研究聚焦牙龈卟啉单胞菌(Porphyromonas gingivalis)——一种革兰阴性厌氧菌,也是牙周炎发生发展的核心病原体——的铁获取机制。该菌属于拟杆菌门(Bacteroidota),是血红素营养缺陷型,缺乏完整的血红素生物合成途径,也不产生或利用铁载体,因此必须依赖宿主来源的血红素作为铁的主要来源。然而,目前学界尚未明确该菌从血红素中萃取铁的具体分子机制。既往研究发现,拟杆菌门成员普遍携带Hmu系统,其中HmuS蛋白与钴螯合酶(CobN)同源,但在牙龈卟啉单胞菌中的功能尚未被系统解析。鉴于血红素代谢与细菌毒力密切相关,阐明HmuSPg的功能,不仅能填补该菌铁获取机制的研究空白,也可为靶向阻断病原体营养供给的防治理念提供新依据。
研究人员为开展研究采用了多维度技术体系:以牙龈卟啉单胞菌野生型W83株为对照,构建hmuSPg基因缺失突变株、回补株及对照过表达株;通过紫外-可见光谱分析蛋白与血红素的相互作用及代谢动力学;采用高效液相色谱与液相色谱-质谱定量细菌胞内及胞外色素中的血红素与原卟啉IX(PPIX);利用RNA测序与实时荧光定量PCR解析基因表达谱变化;结合蛋白质免疫印迹、酶活性分析及生物膜形成实验评估表型差异;并通过AlphaFold结构建模与系统发育分析预测蛋白结构与进化关系。
研究结果分为四个核心部分。第一部分“HmuSPg属于螯合酶家族”显示,HmuSPg由约1450个氨基酸残基组成,分子量约165 kDa,与脆弱拟杆菌HmuSBf氨基酸序列一致性达47.35%,与钴螯合酶及镁螯合酶(ChlH)同属螯合酶家族,但形成独立的进化分支;结构预测显示其包含6个结构域,其中结构域IV富含甲硫氨酸且形成表面暴露环,与经典螯合酶存在显著差异。第二部分“HmuSPg可能定位于周质空间”指出,该蛋白N端含信号肽,N端与C端均含跨膜α螺旋,为膜锚定蛋白;在大肠杆菌模型中,重组HmuSPg主要定位于内膜,C端暴露于周质侧,提示其在天然宿主中可能同样定位于周质空间。第三部分“HmuSPg是参与血红素代谢的血红素结合蛋白”证实,纯化的带组氨酸-麦芽糖结合蛋白(His-MBP)标签的HmuSPg可与血红素特异性结合,氧化态下Soret峰位于409 nm,还原态下红移至427 nm,且结合模式与HmuSBf一致;体外代谢实验显示,在NADH与牙龈卟啉单胞菌内膜组分共同作用下,HmuSPg可催化血红素降解,表现为Soret峰(424 nm)与Q带(528 nm、559 nm)吸光度随时间下降;在ΔhmuSPg突变株中,胞内及胞外色素的PPIX含量均显著低于野生型,提示该蛋白参与铁从血红素中释放的过程。第四部分“hmuSPg基因失活诱导铁/血红素转运系统与细菌毒力潜能的转录重塑”表明,hmuSPg基因在铁与血红素匮乏条件下表达上调;突变株虽生长速率、总铁含量与血红素吸附能力无显著变化,但RNA测序显示80个基因表达发生改变,其中hmu操纵子其余基因表达上调,而TonB依赖性受体、阳离子外排系统及fimA/fimB(长菌毛组分)基因表达下调;表型层面,突变株生物膜形成能力降低,赖氨酸特异性牙龈蛋白酶(Kgp)活性下降,精氨酸特异性牙龈蛋白酶(Rgp)活性升高,同时参与铁获取的IhtB蛋白表达减少。
讨论部分进一步阐释了结果的生物学意义:拟杆菌门成员不依赖铁载体,牙龈卟啉单胞菌仅能通过血红素获取铁,HmuSPg作为Hmu系统的组分,可能在周质空间中通过两步机制参与血红素降解——位点I(Met75与His252)结合血红素,位点II(His544与His1217)催化铁释放,生成的PPIX可分泌至胞外形成色素,铁则通过FeoB转运体进入胞质;该蛋白在实验室培养条件下并非必需,可能因其他铁获取通路(如Iht系统)的代偿作用,但在体内低铁微环境中可能发挥关键作用;突变株的毒力相关表型改变,如生物膜形成能力下降、牙龈蛋白酶活性失衡,均与铁稳态紊乱直接相关。研究最终得出结论:HmuSPg可在体外结合血红素并表现出依赖NADH与内膜组分的代谢活性,体内参与血红素铁释放与PPIX生成,可能作为血红素处理复合物的组分,在特定体内铁需求状态下参与牙龈卟啉单胞菌的血红素代谢,这一发现揭示了拟杆菌门中一类新型的血红素利用机制。
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