《Genes & Diseases》：In vivo CAR-T for the treatment of autoimmune diseases: Current progress and future directions
自身免疫性疾病是一类临床挑战性疾病，现有免疫抑制疗法无法清除致病免疫细胞群（如自身反应性B细胞、浆细胞和抗原呈递细胞），导致慢性炎症持续存在。嵌合抗原受体T（CAR-T）细胞疗法提供了一种靶向清除这些驱动疾病细胞群的精准策略。早期体外（ex vivo）CAR-T细胞在重症自身免疫病中的研究显示，其可有效耗竭B细胞并实现持续缓解，但毒性、高昂成本及冗长的制备流程限制了其广泛应用。体内（in vivo）CAR-T技术通过病毒载体或信使核糖核酸（mRNA）-脂质纳米颗粒在体内直接重编程患者循环T细胞生成CAR-T细胞，旨在克服上述障碍。临床前及新兴临床数据显示，这些平台可快速重编程循环T细胞，诱导强效B细胞清除，并在难治性疾病中实现临床改善。病毒载体可实现持久表达，但存在基因组整合风险与免疫原性顾虑；mRNA-脂质纳米颗粒（LNP）系统则支持瞬时、可控的CAR表达，且具有更高的生产可扩展性。这些进展使体内CAR-T细胞成为自身免疫性疾病极具前景的治疗策略。持续推进递送特异性、安全性工程、试验设计及成本效益生产，对于将该疗法转化为广泛可及的治疗手段至关重要。本综述整合了临床前及新兴临床证据，比较了不同递送平台，并针对安全性工程、试验设计与生产提出了实用建议，以指导未来转化工作并加速临床落地。
引言
自身免疫性疾病是一类复杂的慢性炎症性疾病，特征为免疫耐受崩溃，涵盖系统性红斑狼疮、类风湿关节炎及多发性硬化症等，可导致持续性炎症与渐进性器官损伤。尽管糖皮质激素、传统免疫抑制剂及靶向生物制剂已取得一定疗效，多数系统性自身免疫病患者仍无法实现持续缓解。现有疗法主要通过广谱抑制免疫系统发挥作用，使患者面临感染、恶性肿瘤、代谢毒性及累积性器官损伤风险，同时未触及疾病根本病理机制，导致相当比例患者发展为难治性疾病，需长期升级免疫抑制治疗。这凸显了对更安全、可控且能显著缩短疗程的精准疗法的迫切需求。
从机制层面看，自身反应性B细胞、长寿命浆细胞及功能失调的抗原呈递细胞（尤其是浆细胞样树突状细胞与传统树突状细胞）通过持续产生自身抗体、激活补体及持续刺激T细胞，维持慢性自身免疫反应。以利妥昔单抗及抗B细胞活化因子（BAFF）抗体为代表的B细胞清除疗法，已证实清除致病B细胞谱系并重建失调免疫回路的可行性，但这些疗法常无法清除组织内已存在的或长寿命的自身反应性克隆，导致疾病复发，且存在感染风险升高、耐药及潜在毒性等局限。因此，新型抗B细胞疗法成为近年研究热点。
近年来，免疫系统重置成为极具前景的治疗策略。嵌合抗原受体（CAR）T细胞技术提供了一种全新的抗原导向方法：通过合成受体将特异性抗原识别（通常通过单链可变区片段，scFv）与胞内激活及共刺激模块偶联，使T细胞能以主要组织相容性复合体（MHC）非依赖方式杀伤靶细胞。靶向分化簇19（CD19）的CAR-T细胞在B细胞恶性肿瘤中的成功临床应用，证实基因工程细胞毒性淋巴细胞可有效清除致病自身反应性B细胞，推动了CAR-T技术在自身免疫性疾病中的应用探索——此类疾病中自身反应性B细胞与浆细胞在自身抗体持续产生及慢性T细胞活化中起关键作用。值得注意的是，早期利用体外（ex vivo）制备的CD19 CAR-T细胞治疗难治性系统性红斑狼疮、炎性肌病及系统性硬化的临床试验，已显示出显著疗效，包括快速B细胞耗竭、血清学指标正常化，且大量患者实现无药物缓解。此外，自身免疫适应症的靶点拓展正从谱系水平耗竭转向提升抗原精度与回路水平调控：抗原特异性策略（如呈递疾病相关自身抗原以选择性清除致病B细胞克隆的嵌合自身抗体受体T细胞，CAAR-T；或能识别自身反应性T细胞或致病性抗原呈递复合物的肽-MHC导向CAR平台）可区分致病性免疫群体与保护性免疫；靶向上游免疫调节因子（如CD40-CD40L轴或B细胞生存通路BAFF/APRIL）则从系统层面打断致病性免疫放大环路，而非仅清除终末效应细胞。CAR技术的创新还越来越多地整合逻辑门控与环境感知回路，以提升单抗原靶向以外的安全性与特异性——逻辑门控可整合双抗原、细胞因子谱或微环境信号等多重输入，将效应细胞激活限制在病理情境中，从而降低脱靶毒性并拓展可行靶点范围。
传统自体CAR-T细胞制备过程成本高、周期长且技术复杂，需个体化采集细胞、病毒转导、扩增及放行检测，耗时数周。考虑到其在非恶性慢性病中的广泛应用潜力，细胞因子释放综合征与神经毒性等风险仍是重大顾虑。为此，领域内涌现出多项并行创新以拓展其在自身免疫病中的适用性：CAAR-T等抗原特异性精准策略可选择性识别致病B细胞受体，在减少 collateral 耗竭的同时治疗自身抗体介导的疾病；调节性表型CAR-T细胞（CAR-Tregs）旨在通过靶向递送免疫抑制至炎症组织，同时保留全身免疫功能，尤其适用于器官特异性或耐受重建策略；同种异体“现货型”CAR-T产品与基因组编辑方法则试图通过创建通用供体细胞克服生产与可及性障碍，尽管宿主抗移植物生物学反应仍是挑战，但基因编辑可在一定程度上缓解这一问题。这些局限催生了对体内（in vivo）CAR-T技术的浓厚兴趣——该技术利用病毒载体或脂质纳米颗粒将CAR基因材料直接递送至患者T细胞，实现原位生成CAR-T细胞，从而绕过体外操作步骤，将生产时间从数周缩短至数小时或数天，降低制造成本，并可能实现可调或瞬时CAR表达，较永久性编辑的体外CAR-T更具安全性优势。
综上，体内CAR-T疗法凭借简化的生产流程与潜在的治愈性免疫系统“重置”能力，有望实现精准靶向免疫调控，随着临床经验积累，预计将突破传统免疫抑制疗法的长期局限，重塑重症自身免疫性疾病的治疗格局。
传统体外CAR-T疗法治疗自身免疫性疾病的挑战
尽管CAR-T细胞疗法在治疗B细胞恶性肿瘤中成效显著，但其应用于慢性自身免疫性疾病时面临多重根本性挑战，包括毒性、生产复杂性、成本、可扩展性及生物学局限，共同阻碍了现有体外CAR-T平台的广泛普及，亟需开发体内CAR-T策略以简化生产流程并提升安全性。
首要挑战是严重炎症毒性反应风险，包括细胞因子释放综合征与免疫效应细胞相关神经毒性综合征。细胞因子释放综合征由CAR-T细胞快速激活并释放高水平细胞因子（IL-6、IL-1、IFN-γ与GM-CSF）引发，可导致高热、血管扩张、毛细血管渗漏、凝血功能障碍及多器官功能衰竭，需积极支持治疗；免疫效应细胞相关神经毒性综合征表现为脑病、失语、惊厥，罕见情况下可出现脑水肿，可与细胞因子释放综合征并发或独立发生。尽管托珠单抗、糖皮质激素及IL-1抑制剂等管理策略已改善预后，但这些毒性反应的不可预测性使其不适用于病情稳定的慢性自身免疫病患者，尤其是不伴危及生命疾病活动度的患者，成为CAR-T疗法向肿瘤外领域拓展的主要障碍。
体外CAR-T细胞治疗还存在生物学局限：首先，CD19导向CAR-T细胞的临床经验显示，抗原逃逸是疾病复发的公认机制，也可能阻碍对自身反应性B细胞克隆的持续清除；其次，位于骨髓与炎症病灶的长寿命浆细胞对常规CD19导向策略表现出抵抗或表型异质性，可能导致致病性自身抗体持续产生；此外，组织驻留记忆B细胞与异位淋巴结构（如系统性红斑狼疮、类风湿关节炎及多发性硬化症中可见）可作为局部B细胞反应的储备库，组织微环境与物理屏障可能阻碍CAR-T细胞的递送与浸润，限制其对这些储备库的清除能力；再者，体外激活与扩增过程可能导致T细胞耗竭，降低持久性并削弱长期免疫重编程效果。这些生物学挑战提示，传统CAR-T细胞疗法更适用于血液系统恶性肿瘤，而非慢性局灶性自身免疫性疾病。
CD19与B细胞成熟抗原（BCMA）是目前自身免疫病CAR-T研究的两大主要靶点，因其在多种B细胞群体中广泛表达，意味着CAR-T细胞会同时清除致病性与保护性B细胞。尽管在恶性肿瘤背景下B细胞大幅减少可接受，但对于需终身治疗的自身免疫病患者而言，这可能导致长期低丙种球蛋白血症、反复感染及静脉免疫球蛋白依赖。肿瘤CAR-T受体移植的长期随访研究显示，免疫重建可能需要数年且未必完全，提示将类似方法大规模应用于自身免疫病人群可能导致持续性免疫缺陷，这是需审慎考量的关键问题，也凸显了开发短期可调B细胞靶向策略的必要性——这正是体内CAR-T平台的重要理论优势之一。
自体CAR-T细胞疗法需复杂、多步骤的个性化生产流程，包括血细胞采集分离、冷冻保存与运输、T细胞激活扩增、病毒载体转导、纯化质控及最终回输，典型的“静脉到静脉”周期耗时数周，且可能因初始采集质量差、T细胞产量不足、体外扩增失败、质控不合格或物流障碍而延迟甚至失败，漫长的生产周期成为其在自身免疫病中应用的显著障碍。
此外，当前自体CAR-T细胞疗法成本过高，难以支撑慢性病长期管理。商业化CAR-T产品采购成本通常在37.3万至47.5万美元之间，若计入住院、并发症管理（如细胞因子释放综合征/免疫效应细胞相关神经毒性综合征处理）、桥接治疗、检测及相关医疗资源，总治疗成本可超过50万美元，甚至达100万美元。尽管在难治性血液系统恶性肿瘤治疗中尚可接受，但对于影响全球数百万患者的非致死性自身免疫性疾病而言完全不可行，可负担性成为自体CAR-T细胞疗法向非肿瘤领域拓展的首要障碍。
体内CAR-T细胞治疗自身免疫性疾病的新型技术平台
体内CAR-T策略旨在通过直接将编码CAR的遗传物质递送至患者淋巴细胞，实现原位产生CAR表达T细胞，从而绕过体外细胞生产环节。这些策略主要分为两大类：病毒载体平台可通过基因组整合或长效游离体存续实现持久表达；非病毒纳米颗粒平台（尤其是携带修饰mRNA的可电离脂质纳米颗粒）可产生瞬时、可控的CAR表达，且无基因组整合风险。尽管各平台存在特定权衡，但日益增多的动物与早期人体证据支持谨慎推进临床转化，并根据疾病生物学特征与安全谱选择适配平台。
病毒载体用于体内CAR-T细胞疗法
病毒载体因其高转导效率、持久表达能力及在基因治疗领域的广泛临床与生产经验，成为体内CAR-T递送策略的核心组分。慢病毒载体（LV）与腺相关病毒（AAV）是实现全身或靶向给药后T细胞稳定CAR表达的最成熟工具，可确保稳定长期表达；同时，新型病毒来源包膜或病毒样递送载体（EDV/VLP）通过增强模块化靶向与制剂灵活性，有望加速转化进程，相较于体外流程更具生产简化与可及性提升优势。然而，各类载体在亲和力、载荷容量、免疫原性与安全性方面存在显著差异，影响其用于自身免疫适应症的适用性与安全性，目前多数体内CAR-T策略仍处于临床前或早期临床阶段。
慢病毒载体平台在体内与体外CAR-T细胞工程中均进展迅速，主要得益于其染色体整合能力，可促进增殖淋巴细胞中CAR的持续表达，从而保障长期疗效与细胞持久性。靶向性慢病毒（如CD4-LV与CD8-LV）已在多种人源化小鼠模型中证实可实现选择性体内标记与功能性CAR-T细胞生成，表现出强大的抗原依赖性细胞毒性。在此基础上，表面工程化慢病毒颗粒（包括VivoVec系列与UB-VV100）通过在表面整合T细胞靶向配体与共刺激信号，提升了体内生成CAR-T细胞的选择性与功能性扩增。临床前研究显示，其在小动物模型中可有效生成CAR，实现靶细胞的持久B细胞清除。值得注意的是，采用表面工程化慢病毒颗粒的非人类灵长类动物研究提供了有力的转化证据：在猕猴中，展示抗CD3基多结构域融合配体的VVVec颗粒（VVPs）可在无需淋巴清除的情况下实现高效体内T细胞转导，生成强健的CAR表达T细胞群，其在循环中快速扩增，并于一周内诱导接近完全的B细胞耗竭；B细胞清除效果持久，在应答动物中可持续8-11周，且CAR-T细胞在B细胞恢复时可再次扩增，提示功能性持久性；同时观察到明确的剂量-反应关系，较低载体暴露无法实现持续CAR表达或B细胞耗竭。这些发现证实了该策略的强效靶向活性与可接受短期耐受性，为首次人体体内慢病毒CAR-T研究建立了关键转化桥梁。
AAV因低致病性、明确的安全谱及在非增殖细胞（如肝脏、肌肉与神经细胞）中实现长期表观遗传与外来基因表达的能力，是最早用于体内递送CAR基因的病毒载体之一。Wu等人的概念验证研究显示，向携带荧光素酶标记的MT-2成人T细胞白血病异种移植的人源化NCG-HuPBL小鼠单次静脉注射编码CD4导向CAR的AAV载体，可在48小时内检测到CD45+细胞上的CAR表达，并诱导显著肿瘤消退，较对照组获得明确生存获益；作者观察到CAR在淋巴组织中持续检出，且CAR扩增期间仅出现适度细胞因子升高，支持了一剂次体内重编程策略的可行性，同时强调需开展剂量探索与生物分布研究。然而，AAV也存在局限：包装容量有限、人群中普遍存在预存抗AAV免疫反应，以及针对衣壳与转基因的宿主免疫反应，这些因素可能影响其效力与生物分布。因此，尽管AAV介导的体内CAR生成在功能上可行且极具吸引力，但其临床适用性仍有赖于进一步工程改造与临床验证，以解决载体容量、免疫原性、剂量与生物分布相关的风险。
安全性、生物分布与免疫介导局限是选择载体时的关键因素，显著影响自身免疫病的给药途径与治疗设计。历史上关于整合型逆转录病毒载体在造血基因治疗中诱发插入致癌性的报道，凸显了载体整合位点特征及启动子与增强子选择的重要性。病毒的免疫原性及其引发的固有免疫反应可能限制转导效率、改变生物分布或诱导系统性炎症，因此在将体内病毒递送用于免疫系统紊乱患者时，需谨慎确定剂量、开展衣壳与颗粒工程，并制定免疫管理策略。监管机构通常要求对载体生物分布、转基因扩散、有害转导及遗传毒性进行严格的非临床与临床评估，尤其是在采用全身给药治疗抗原广泛表达的自身免疫病时，这些要求十分严格，可能影响开发路径与试验设计。
总体而言，利用病毒载体的体内CAR-T递送平台在临床前试验中已显示出强大的效力与功能转移能力，越来越多的非人类灵长类模型转化证据支持了该技术在体内生成持久功能性CAR-T细胞的可行性与可控性。但仍需多项工程改进计划以解决免疫原性、特异性与载荷限制问题。这些进展推动我们根据疾病类型做出针对性选择：例如，对B细胞介导的自身免疫病（如系统性红斑狼疮）采用全身性慢病毒载体或包膜递送载体（EDV）平台，而对器官特异性自身免疫病则采用更局限的AAV方法，同时具备联合策略（如同步递送免疫调节剂）的潜力。
mRNA-LNP平台用于体内CAR-T细胞疗法
脂质纳米颗粒（LNP）已成为体内mRNA递送的主导性非病毒平台，得益于其先进的临床开发程度、大规模生产可扩展性，以及包裹与保护化学修饰mRNA并实现高效胞质翻译的能力。典型LNP由可电离阳离子脂质、辅助脂质、胆固醇与糖脂组成，可使脂质体逃逸内质网并实现瞬时蛋白表达。这些特性对于需要可调短期CAR表达的应用极具吸引力，在非恶性疾病中实现了疗效与安全性的平衡。LNP的设计改造基础研究与相关临床经验，均得益于mRNA疫苗与治疗药物的实践积累。
Rurik等人证实LNP可有效在体内生成功能性CAR-T细胞，其概念验证结果极具说服力：他们通过特异性靶向T细胞的脂质纳米颗粒递送修饰mRNA，产生了短寿命的抗纤维化CAR-T细胞，可减轻小鼠模型的心脏纤维化。该研究确立了体内重编程循环T细胞的生物学可行性，并为抗原选择、靶向配体策略及系统性LNP给药考量提供了实用框架。随后，Mitchell优化了可电离脂质的化学结构与抗体偶联脂质纳米颗粒（Ab-LNPs），增强了其血管外靶向能力与选择性转染循环T细胞的能力，在小鼠模型中实现了剂量依赖性CAR表达与显著B细胞清除效应。此外，既往研究表明，通过筛选优化可电离脂质，LNP可在体外条件下高效将mRNA递送至原代人类T细胞并诱导功能性蛋白表达，为体内CAR-T细胞平台的开发奠定了关键技术基础。Bimbo等人展示了利用靶向脂质纳米颗粒实现T细胞特异性非病毒DNA递送，在体内生成CAR表达T细胞，在临床前模型中实现了持久CAR表达与抗原特异性靶细胞耗竭，且短期耐受性可接受，这一工作拓展了非病毒LNP载荷的选择范围，为更长时效的体内CAR-T疗法铺平了道路。Liu等人报道了用于治疗心肌纤维化的体内CAR-T细胞生成，揭示原位工程化CAR-T细胞可迁移至受损心肌并减轻动物模型的纤维化负荷，支持了该平台在器官特异性非肿瘤适应症中的适用性。
从机制层面看，该领域采用了两种互补的工程策略：一是通过调整制剂配方与脂质选择实现被动优化，促进脂质体生物分布向免疫器官的肝外倾向转变，可通过引入选择性器官靶向（SORT）分子或改变内外电荷，提升其在脾脏及其他次级淋巴器官的富集；二是通过在LNP表面修饰靶向泛T分子（CD3、CD5与CD8）的抗体、纳米抗体或配体，促进T细胞的选择性结合与内化。这些策略已被证实可在体外有效将功能性CAR mRNA递送至T细胞，诱导表面CAR表达；大量证据支持其在原代人类T细胞体外应用中的可行性。值得注意的是，CAR表达通常是瞬时的，在数小时至24-48小时内达峰，随后在数天内下降。这种动力学特征具有优势：可最大限度降低长期靶点相关免疫抑制或不可逆毒性的风险，并在必要时允许重复给药。
除可行性外，采用LNP的体内CAR-T细胞疗法在自身免疫病治疗中还具有多项实用优势：首先，LNP的生产工艺兼容集中化药品生产质量管理规范（GMP）生产，并可通过冻干与制剂方法简化流程；重要的是，无基因整合特性消除了整合型病毒载体相关的插入突变风险。在自身免疫病背景下，CAR的瞬时表达可能更具优势，在实现免疫“重置”的同时避免了保护性细胞群体的永久耗竭。此外，临床前安全性研究还探索了同步递送调节性RNA（如小干扰RNA），旨在暂时抑制PD-1以增强CAR-T细胞疗效，同时最小化系统性免疫激活。
理论与临床前优势现已开始转化为人体临床试验经验。近期一项报告描述了一种体内LNP-mRNA方法，成功在难治性系统性红斑狼疮患者中生成表达CD19 CAR的T细胞，导致B细胞快速显著减少并改善患者病情。该研究采用了由产学研联合体开发的T细胞靶向LNP药物载体。尽管该报告仍处于初步阶段且规模有限，但首次证实LNP-mRNA介导的体内CAR生成对人类自身免疫病是安全且具有生物活性的。这一临床里程碑支持加速LNP平台在其他难治性自身免疫病中的评估，并强调了严格药物监测与标准化生物标志物终点（包括CAR细胞频率、抗药物免疫反应与体液免疫重建）的必要性。
综上，mRNA-LNP平台是实现临床可扩展体内CAR-T细胞生成的首要非病毒方法。LNP-mRNA的独特优势包括瞬时表达、可调CAR表达、无基因整合及易于生产，使其在自身免疫病治疗中极具吸引力。安全性与治疗剂量调节能力是管理此类疾病的关键因素。当前的临床前模型与初步人体病例系列，为推进针对特定疾病的精心设计的临床试验提供了有力证据，同时也需兼顾生物分布、固有免疫反应、重复给药相关免疫原性及标准化免疫监测的需求。
体内CAR-T细胞疗法治疗自身免疫性疾病的未来展望
体内CAR-T疗法在自身免疫病中的未来转化，取决于领域能否将生物学精度与工程控制相整合。下一代策略不应再依赖广谱免疫耗竭，而应日益聚焦于选择性免疫调节，采用抗原特异性与逻辑门控设计，以区分病原体与保护性免疫区室。与此同时，递送平台需向能够提供高效且严格调控CAR表达的方向演进，最大限度减少脱靶效应与长期基因组风险，同时提升对骨髓、关节与中枢神经系统等活动性炎症部位的组织可及性。同样重要的是开发安全架构，以实现对CAR-T细胞持久性与功能的动态控制，包括瞬时表达系统、内置终止开关与免疫逃逸设计。这些进展必须与临床实施的进步相匹配，包括标准化生产、可扩展制造与合理的患者分层。
降低体内CAR-T疗法的生物学与免疫风险
将体内CAR-T疗法转化为自身免疫病的一线常规治疗，首要挑战是最小化与体外CAR-T方法相关的失控性系统性炎症与神经毒性风险。鉴于这些症状可能危及生命，在非恶性适应症中必须谨慎选择载体与剂量。采用非整合瞬时表达平台（如mRNA-LNPs或非整合EDVs）可较整合型载体显著降低长期遗传毒性风险；此外，靶向递送方法有助于限制非靶向转导与肝脏摄取，从而避免潜在不良炎症反应。优化核酸化学与免疫调节佐剂对于减少给药后的固有免疫识别与细胞因子诱导至关重要，这些策略是推动治疗性mRNA快速临床转化的关键，也是在自身免疫病人群中安全重复给药的核心。在需要使用整合型病毒平台且要求持久CAR表达的场景下，必须实施严格的载体设计、全面的整合位点监测与长期追踪，以缓解早期基因治疗试验中提示的插入致癌历史风险。监管框架与相关指导文件目前正在针对研究性新药（IND）策略制定，对生物分布、毒理学与监测有明确预期，开发者在推进自身免疫病首次人体试验前必须遵守这些要求。
临床转化与早期试验设计
体内CAR-T疗法的一个关键转化缺口在于：循环中生成的CAR表达T细胞能否有效迁移至疾病相关组织区室（如骨髓、中枢神经系统与炎症关节）并发挥功能。这些部位的进入受趋化因子梯度、内皮黏附程序及解剖屏障（包括血脑屏障）调控。尽管如此，临床与临床前证据均表明，在适当条件下CAR-T细胞可到达 sanctuary 部位：过继转移的CAR-T细胞已在中枢神经系统淋巴瘤中显示出活性，LNP生成的CAR-T细胞也被证实可归巢至受损心肌并在纤维化模型中发挥局部治疗作用。工程策略（如趋化因子受体调控、黏附分子调整及器官靶向递送平台，包括肝外与脾偏向LNP制剂）为改善组织特异性归巢与持久性提供了可行路径。近期小鼠模型研究显示，融合纳米胶囊/T细胞靶向LNP递送系统可在体内生成功能性CAR-T细胞，并在胶原诱导性关节炎模型中实现B细胞耗竭并显著改善关节炎结局。从转化角度看，早期临床研究应纳入组织水平生物分布与功能读数，包括配对血液-组织采样、靶器官中CAR拷贝数动力学及基于成像的细胞追踪，以确定体内生成的CAR-T细胞是否在疾病部位达到足够的暴露量与活性。
早期临床开发应优先考虑重症难治性自身免疫病患者，在其潜在获益大于较高初始风险的前提下，采用哨兵给药法，并配合谨慎的剂量递增设计，旨在确定能够促进致病细胞清除而不诱发过度系统性炎症的药代动力学窗口。若可行，试验必须纳入统一的免疫监测，包括定量CAR细胞动力学、高分辨率细胞因子组合、抗载体与抗CAR抗体检测及组织采样，这对于捕捉靶向效应（如B细胞动态与自身抗体水平）及细胞因子释放综合征与免疫效应细胞相关神经毒性综合征的早期安全信号至关重要。允许在试验期间调整给药间隔或给药途径的适应性设计，可加速确定平衡疗效与耐受性的治疗方案。此外，快速B细胞清除与病原体抗体水平下降等生物标志物可提供早期反馈，指导剂量递增决策。鉴于瞬时载体系统可能需要重复给药，早期研究应前瞻性评估递送载体的免疫原性与重复给药的可行性，而非假设单剂即可带来持久效应。
与其他基于CAR的策略的比较
除主要通过耗竭广谱B细胞群体的传统细胞毒性CAR-T策略外，多种新一代CAR平台已涌现，旨在重新定义自身免疫病的免疫耐受重建。CAR-Tregs旨在通过递送抗原特异性免疫抑制而非免疫消融发挥作用，将CAR导向的组织靶向性与叉头盒蛋白P3阳性（FOXP3+）Tregs的抑制程序相结合，在局部抑制致病性免疫反应的同时保留全身免疫功能。临床前与转化研究显示，CAR-Tregs可在器官特异性自身免疫病与移植场景中重建耐受，尽管在维持谱系稳定性与可扩展生产方面仍存在挑战。与此同时，抗原精准策略（如CAAR-T与T细胞抗原偶联物（TAC-T）设计）通过基于致病性B细胞受体选择性清除自身反应性B细胞克隆，直接解决了泛B细胞靶向固有的特异性困境，从而保留了保护性体液免疫。Dsg3-CAAR-T在寻常型天疱疮中的里程碑式演示，印证了这一概念在自身免疫病中的可行性。此外，同种异体“现货型”CAR-T平台通过实现标准化、快速交付的产品，为自体体外CAR-T细胞的可及性与生产瓶颈提供了互补解决方案，尽管宿主抗移植物排斥与无长期免疫抑制下的持久性仍是主要转化障碍。多重基因编辑、人类白细胞抗原（HLA）工程与免疫伪装策略的进步正逐步缓解这些局限，拓展同种异体CAR-T细胞在非恶性疾病中的可行性。
