脱细胞脂肪基质对小鼠模型中创面再生的影响

《Aesthetic Plastic Surgery》:Effect of Acellular Adipose Matrix on Wound Regeneration in a Murine Model

【字体: 时间:2026年05月23日 来源:Aesthetic Plastic Surgery 2.8

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  背景:慢性及急性创面在临床实践中构成重大挑战。现有治疗方案虽具治疗价值,但受限于高成本、技术复杂性及供给不足。脱细胞脂肪基质(acellular adipose matrix, AAM)来源于人脂肪组织的脱细胞处理,含有细胞外基质(extracellular

  
背景:慢性及急性创面在临床实践中构成重大挑战。现有治疗方案虽具治疗价值,但受限于高成本、技术复杂性及供给不足。脱细胞脂肪基质(acellular adipose matrix, AAM)来源于人脂肪组织的脱细胞处理,含有细胞外基质(extracellular matrix, ECM)成分及生物活性分子,可能促进组织修复与血管生成(angiogenesis)。本研究旨在评估AAM促进小鼠创面愈合的治疗潜力。方法:人腹部脂肪组织经机械、化学及酶解脱细胞处理制备AAM。于裸鼠背部建立双侧全层皮肤缺损(直径1 cm)。对照组接受抗生素软膏处理,实验组接受AAM处理。创面闭合情况监测16天。通过组织学及免疫荧光分析评估上皮化、胶原重塑及血管生成。统计学分析采用Mann-Whitney U检验,以p<0.05为显著性标准。结果:AAM处理组较对照组表现出更快的上皮覆盖及肉芽组织形成。AAM组平均愈合时间(9.0±1.67天)显著短于对照组(12.0±1.79天)。CD31染色证实AAM组存在致密微血管网络及显著增强的血管生成。两组胶原纤维排列均匀,未见异常纤维化。结论:AAM可有效增强体内创面再生及血管生成。其生物活性、可及性及成本效益生产潜力表明,AAM可作为整形与美容外科创面管理中一种临床适用的"现成"生物材料。
## 研究背景与问题

创面愈合是临床面临的重大挑战,对国家医疗系统造成沉重负担并严重影响患者生活质量。据文献报道,欧洲约有150万至200万人罹患急性或慢性创面,美国慢性创面患者达650万,年均创面管理成本在英国估计为50亿英镑,在美国超过250亿美元。除经济负担外,患者还承受疼痛、心理困扰、社会隔离、焦虑、慢性发病甚至死亡等后果。为加速创面愈合,研究人员已尝试高压氧治疗、负压创面治疗、生长因子、干细胞及皮肤替代物等多种策略。皮肤替代物作为异质性生物材料,可替换细胞外基质(extracellular matrix, ECM)并加速创面愈合,按来源可分为生物源性及合成性两类。生物源性替代物如人脱细胞真皮基质(human acellular dermal matrix, ADM)已应用二十余年,用于治疗包括烧伤及糖尿病足溃疡在内的急慢性创面。然而,人脱细胞基质来源于尸体组织,部分国家供给受限,且存在免疫原性及病原体传播风险。此外,其制备过程劳动密集、耗时较长,尤其在脱毛及灭菌环节,导致生产成本高昂、患者可及性受限。

脂肪组织是人体最丰富、最具可扩展性且采集安全的组织之一。近年来,脱细胞脂肪基质(acellular adipose matrix, AAM)——即从脂肪组织中分离的ECM——作为一种有前景的替代方案被提出。脂肪组织经机械、化学及生物学处理完全去除细胞成分后,AAM保留胶原、弹性蛋白、蛋白聚糖及层粘连蛋白等ECM成分,作为生物支架促进血管新生(neovascularization)及再上皮化(re-epithelization),从而推动创面愈合。且AAM易于应用于各种大小及深度的创面。基于此背景,研究人员旨在利用小鼠模型探究AAM对创面愈合的治疗效果,以衔接基础研究与潜在临床应用。

## 主要技术方法

本研究采用人源AAM制备及小鼠全层创面模型评估其愈合效应。人腹部脂肪组织样本来源于30-40岁行腹直肌肌皮瓣乳房重建术患者的废弃组织,经机构审查委员会批准获取。AAM通过改良实验室方案进行机械、化学及酶解脱细胞处理制备。实验动物为10周龄无胸腺裸鼠(体重20-25 g),共6只,于温度控制环境(24±2°C)及12小时光/暗周期下饲养。每只小鼠背部建立两个圆形全层皮肤缺损(直径1 cm),采用随机化设计及自身对照:一侧创面接受AAM处理,对侧创面接受常规抗生素软膏作为对照。为减少创面收缩干扰,采用自制硅胶夹板环(内径1 cm,厚度1 mm)环绕创面并以尼龙缝线固定。所有创面覆盖无菌聚氨酯泡沫敷料并以弹性胶带固定。创面愈合进程通过术后第0、2、4、6、8、10、12、14、16天数码摄影记录。第16天取材进行组织形态计量学分析,包括苏木精-伊红(hematoxylin-eosin, H&E)染色、Masson三色染色及CD31免疫荧光染色,图像分析采用ImageJ软件。统计学分析采用非参数Mann-Whitney U检验。

## 研究结果

**AAM制备**:经五次冻融循环及后续处理,最终AAM呈白色纤维组织外观,反映了脂肪组织ECM富含胶原的成分特征。冻融循环限制为五次,因既往研究表明超过五次并不能增强效果,反而可能损伤AAM微观结构。

**创面再生的宏观观察**:术后早期(0-7天),AAM处理组与对照组在创面大小或深度方面未见显著宏观差异。AAM附着于创面床并保持原位以避免干扰愈合过程。自术后第8天起,两组创面闭合出现明显差异,AAM处理组表现出更快的肉芽组织形成及更早的上皮覆盖。定量分析显示,AAM组平均愈合时间(9.00±1.67天)显著短于对照组(12.00±1.79天)(Mann-Whitney U检验,p=0.026;每组6处创面),表明AAM有效加速小鼠创面再生。

**创面再生的组织学发现**:术后第16天取材进行组织学分析。H&E及Masson三色染色评估显示,AAM组与对照组均实现完全上皮覆盖,确认完全再上皮化。两组炎性细胞浸润均较少且程度相当。胶原纤维在肉芽组织中均匀分布,胶原密度或组织未见明显差异。但AAM组新生血管数量更多。

**血管生成分析**:为评估再生创面组织内的血管新生情况,术后第16天对每组五张随机选取切片进行CD31免疫荧光染色。CD31阳性微血管主要分布于新生上皮方下的肉芽组织中。定性观察显示,AAM处理组较对照组呈现更致密、更有序的微血管网络。CD31阳性区域定量分析证实AAM组血管生成显著增强:AAM组CD31阳性区域百分比为0.811±0.167%,对照组为0.500±0.162%(Mann-Whitney U检验,p=0.047;每组5处创面)。该发现表明AAM应用有效促进小鼠创面愈合过程中的血管生成。

## 讨论与结论

AAM来源于脱细胞脂肪组织,是一种有前景的ECM基组织修复与再生材料。既往研究表明,脱细胞脂肪组织保留胶原、弹性蛋白及层粘连蛋白等必需ECM成分,为细胞迁移、增殖及血管生成提供有利环境。AAM还保留血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)等促进血管新生及组织修复的生物活性因子。近期综述报道脱细胞ECM通过支持上皮生长及血管形成加速创面闭合、增强皮肤再生,但多数研究尚处初步阶段、样本量较小,临床相关条件下的临床前数据仍然有限。本研究在人源AAM小鼠全层创面模型中评估其愈合效应,旨在衔接基础研究与潜在临床应用。结果证实AAM处理组愈合更快、血管形成更丰富,支持其作为即用型生物材料用于创面治疗。

AAM的创面愈合效应可能源于其结构及生物学特性的共同作用。结构上,AAM保留天然ECM框架,提供机械支撑并促进成纤维细胞迁移及肉芽组织形成。生物学上,ECM内的生长因子及糖胺聚糖可能逐步释放,通过VEGF/VEGFR及磷脂酰肌醇3-激酶-蛋白激酶B(PI3K-Akt)信号通路促进血管生成。此外,AAM具有可注射性及柔韧性,能良好贴合不规则创面表面,维持湿润且活跃的微环境以促进上皮化及组织再生。临床层面,AAM相较传统材料如ADM具有多重优势:ADM虽安全有效,但昂贵、制备耗时且依赖有限供体;而脂肪组织获取简便、来源丰富且伦理安全性高,使AAM生产更易、成本更低。AAM还可制成多种形态以适应不同形状及深度的创面。理想创面敷料应兼具有效性与经济性,AAM符合这些标准,为复杂性或慢性创面管理提供实用选择。

本研究亦存在局限性:动物数量较少,观察期限于16天,可能无法反映长期愈合及组织重塑情况;AAM诱导血管生成的分子机制未充分探索;尽管脱细胞处理最小化免疫原性,残余DNA或蛋白仍可能引发轻度免疫反应。未来研究应在正常、糖尿病及缺血性创面模型中比较AAM与临床常用合成胶原敷料,并探索AAM联合负压创面治疗以增强其再生潜力。

从转化医学视角,AAM的生物活性及可及性支持其作为临床适用生物材料的潜力。研究结论明确指出:AAM通过加速组织再生及血管生成有效促进小鼠创面愈合。
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